Document Type : Research Paper
Abstract
In plants, several protective systems cooperate to overcome stressful conditions such as the pollution of the medium to heavy metals. In this research, the influence of different concentrations of silver nitrate on growth index, chlorophyll content, H2O2 content, lipid peroxidation, proline content, and the activity of antioxidant enzymes in shoot culture of Artemisia annua L. were investigated. In order to show the effects of the silver as heavy metal, on the aforementioned indices, the experiment was carried out in a completely randomized design with 3 replications. The different concentrations of silver nitrate (0, 0.001, 0.01, 0.1, 1, and 2 mM) were added to liquid MS medium including Artemisia shoot. The results showed that the ratio "fresh weight/dry weight" of the treated samples in 0.1 mM concentration of silver nitrate was increased relative to the control. Chlorophyll a and b contents were increased in 0.001 mM concentration and chlorophyll a was decreased in 0.1 mM concentration in comparison to the control. Among the measured antioxidant enzymes activity, only catalase was increased in all concentrations. Silver nitrate elicitor caused proline, H2O2, and lipid peroxidation to be increased in all concentrations. This study showed that the silver led to the accumulation of H2O2 as a signal and induced the antioxidant defense in shoots.
Keywords
Main Subjects
بررسی پاسخهای دفاع آنتیاکسیدانی در کشت ساقه (Artemisia annua L.) تحت تنش نیترات نقره
لیلا شبانی* و بهنوش صغیرزاده
شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، دانشکده علوم، گروه زیست شناسی
تاریخ دریافت: 4/12/93 تاریخ پذیرش: 25/7/94
چکیده
در گیاهان، سیستمهای دفاعی متعددی برای مقابله با شرایط تنشزا، همانند آلودگی محیط رویش آنها به فلزات سنگین، با یکدیگر همکاری میکنند. در این پژوهش به بررسی اثر غلظتهای مختلف نیترات نقره بر شاخص رشد، رنگیزههای فتوسنتزی، میزان H2O2، پراکسیداسیون لیپید، میزان پرولین و فعالیت سیستمهای دفاعی آنزیمی در کشت ساقه گیاه آرتمیزیا
(Artemisia annua L.) با استفاده از تکنیک کشت بافت پرداخته شده است. بهمنظور نشان دادن اثرات فلز سنگین نقره بر این شاخصها، آزمایشها در قالب طرح کاملاً تصادفی با 3 تکرار اجرا شد. غلظتهای متفاوت (0، 001/0، 01/0، 1/0، 1 و 2 میلیمولار) نیترات نقره به محیط کشت مایعMS حاوی ساقه آرتمیزیا اضافه شد. نتایج نشان داد که نسبت وزن تر به وزن خشک نمونههای تحت تیمار در غلظت 1/0 میلیمولار نیترات نقره نسبت به نمونه شاهد 77/75% افزایش یافت. میزان کلروفیل a و b در غلظت 001/0 میلیمولار افزایش و کلروفیل a تنها در غلظت 1/0 میلیمولار نسبت به شاهد کاهش یافت. از میان آنزیمهای آنتیاکسیدان اندازهگیری شده تنها آنزیم کاتالاز در تمام غلظتها افزایش نشان داد. الیسیتور نیترات نقره باعث افزایش میزان پرولین، H2O2 و پراکسیداسیون لیپیدی در تمام غلظتها شد. نتایج این پژوهش نشان داد که نقره موجود در ساقهها باعث تجمع ترکیباتی مثل پراکسید هیدروژن شده که بهعنوان یک مولکول پیامرسان عمل کرده و باعث القای دفاع آنتیاکسیداتیو در برگها میشود.
واژههای کلیدی: دفاع آنتیاکسیدانی، درمنه یکساله، پرولین، فلزات سنگین، نیترات نقره
* نویسنده مسئول، تلفن: 03814424405 ، پست الکترونیکی: shabani-l@sci.sku.ac.ir
مقدمه
گیاهان جنس Artemisia بوتههای چندساله و آروماتیک متعلق به راسته Asterales، خانواده Asteraceae و طایفه Anthemedeae هستند و به عنوان گیاهان اغلب اجتماعات گیاهی در استپهای خشک و نیمه خشک شناخته شدهاند. A. annuaبا نام فارسی (گندواش) گیاهی یکساله است که جدا از 400 گونه دیگر جنس Artemisia که اغلب دو ساله یا پایا هستند قرار میگیرد و نامگذاری این گونه به این دلیل میباشد (9). پودر سر شاخهای بیشتر گونههای این گیاه دارای ماده سانتونین است. این ماده یکی از ترکیبات گلیکوزیدی موجود در بعضی از گونههای جنس درمنه است و از قدیم به دلیل خاصیت ضد انگلی و سایر خواص دارویی در طب سنتی و جدید مصرف دارویی داشته است. اهمیت جنس درمنه در حال حاضر به دلیل ترکیبات مهم دارویی و اثرات درمانی قابل توجه، در حال افزایش است. ترکیبات ثانویه جنس درمنه تا به امروز به عنوان داروی ضد مالاریا، ضد باکتری، ضد قارچ، آنتیاکسیدان و سایتوتوکسیک مورد مصرف قرار گرفته است (18).
بررسیها نشان میدهد که مقادیر بالای فلزات سنگین (چه آنها که ضروریاند و چه آنها که ضروری نیستند) میتوانند تولید رادیکالهای آزاد و گونههای اکسیژنی فعال و در نتیجه آسیب اکسیداتیو را در گیاهان تحریک کنند (28). براساس خصوصیات فیزیکی و شیمیایی فلزات سنگین، میتوان سه مکانیسم مولکولی احتمالی از قبیل تولید گونههای فعال اکسیژن از طریق خود اکسیداسیون و یا واکنشهایی مانند واکنش فنتون و ایجاد تنش اکسیداتیو، مهار گروههای فعال عملکردی در مولکول زیستی و جایگزینی با یونهای فلزی ضروری در ماکرومولکولهای زیستی و آنزیمها برای سمیت آنها مطرح کرد.
ROSها در همه گیاهان در درجات و مقادیر مختلف و در نتیجه متابولیسم طبیعی تولید میشوند ولی افزایش و تجمع بیش از حد آنها منجر به تنش و آسیب اکسیداتیو میگردد (4). در اثر شرایط تنشزا، تولید اکسیژن فعال افزایش مییابد. اکسیژن فعال در گیاه از طریق فرایندهای اکسیدکنندگی محتویات سلول، اثرات مخرب جبران ناپذیری بر گیاه میگذارد. گیاهان دارای مکانیزمهای متفاوتی برای حذف یا کاهش این ترکیبات مخرب میباشند که در سطوح مختلف تنش وارده، ظاهر میشوند. یکی از این سیستمهای تدافعی، سیستم آنزیمی پرکسیداز و سوپراکسیددیسموتاز است که رادیکالهای آزاد را به پراکسید هیدرژن تبدیل میکند. در ادامه پراکسید هیدروژن توسط پرکسیداز تبدیل به آب میشود. فعالیت این آنزیمها در مواجه با تنشهای محیطی تحریک میشود و از این طریق مقاومت گیاه را به این شرایط تغییر میدهد (2، 29). از طرفی اسید آمینه پرولین تحت شرایط نامطلوب محیطی در گیاه تجمع پیدا میکند. نقش پرولین در تنش، جلوگیری از تخریب آنزیمها، جلوگیری از تجزیه ماکرومولکولها و دخالت در حفظ استحکام دیواره سلولی و پاکسازی رادیکالهای هیدروکسیل (.OH) تولید شده تحت تنش در گیاهان عنوان شده است (36).
به خوبی مشخص شده است که تجمع فلزات سنگین از جمله نقره در غلظتهای بالا، احتمال اثرات کشنده آن را افزایش میدهد. سمیت نقره در محیطهای آبی به غلظت یونهای نقره آزاد وابسته است و کاهش میزان دسترسی زیستی به یون نقره از سمیت آن میکاهد. به طور کلی در میان ترکیبات نقرهدار، ترکیبات قابل حل مانند نیترات نقره سمیت بیشتری نسبت به اشکال غیرقابل حل نقره دارند. حساسیت گونههای گیاهی عالی خشکیزی در برابر سمیت ناشی از نقره متنوع است. در گونههای گیاهی حساس، رشد و جوانه زنی در 5/7 میلیگرم در لیتر نیترات نقره تضعیف شده است (27).
افزایش تولید آرتمیزینین در کشت بافت گیاه A. annua یکی از اهداف بسیاری از گروههای تحقیقاتی میباشد. این هدف تنها از طریق شناخت بیشتر مسیر بیوشیمیایی سنتز این ماده و تنظیم آن توسط فاکتورهای خارجی بهکار رفته امکان پذیر میباشد. تحریک (elicitation) راهبرد مؤثری برای تولید ترکیبات ثانویه بهویژه در کشت سلول و اندام گیاهان در نظر گرفته میشود. برخی از الیسیتورها مثل کیتوزان، اسید سالیسیلیک، متیل جاسمونات، اسید جیبرلیک و عصاره مخمر برای بهبود تولید آرتمیزینین استفاده شدهاند (8). با وجود آنکه پژوهشهای زیادی در زمینه آثار سمی فلزات سنگین بر رشد و متابولیسم گیاهان مختلف انجام شده است، ولی اطلاعات درباره راههای کاهش آسیبهای ناشی از سمیت آنها در گیاهان اندک است. همچنین ازآنجایی که فلزات سنگین در محیط کشت این ویترو منجر به تنش اکسیداتیو و تولید گونه های فعال اکسیژن بعنوان تنش ثانویه می شوند، بنابراین این پژوهش با هدف بررسی پاسخهای دفاع آنتیاکسیدانی و نقش مولکول سیگنال پراکسید هیدروژن در گیاهی با پتانسیل بالای تولید متابولیت ثانویه باارزش آرتمیزینین تحت تنش نیترات نقره انجام شد.
مواد و روشها
بذرهای گیاه A. annua مورد استفاده در این پژوهش از مرکز ملی ذخایر ژنتیکی و زیستی ایران خریداری شد که از شهر گیلان در تاریخ 16/12/2012 جمعآوری شده بود. بذرهای گیاه A. annua بعد از ضد عفونیشدن با محلول هیپوکلریت سدیم 5 درصد در شرایط کاملاً استریل درون شیشههای مخصوص کشت بافت حاوی محیط کشت MS، قرار داده شدند. شیشههای کشت در تاریکی، دمای 25 درجه سانتیگراد و رطوبت 30 درصد درون اتاقک رشد نگهداری شدند. بعد از 8 روز بذرها جوانه زدند و برای جلوگیری از اتیوله شدن گیاهچهها، لامپهای اتاقک رشد با دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی روشن گردیدند. پس از یک ماه گیاهچهها از محیطهای کشت قبلی خارج و به محیط کشتهای جدید انتقال داده شدند و در طول سه ماه هر 20 روز واکشت داده شدند. پس از سه ماه کشت گیاهان در شرایط این ویترو، گیاهان یکسان (با 15-10 سانتیمتر ارتفاع) برای ادامه آزمایش انتخاب شدند. ساقههای (با 3 گره) A. annua به محیط کشت مایع MS منتقل شدند، به محیطهای کشت فوق، نیترات نقره در شش غلظت 0، 001/0، 01/0، 1/0، 1 و 2 میلیمولار اضافه گردید. محیط کشت فاقد نیترات نقره بهعنوان کنترل در نظر گرفته شد. محیطهای کشت به اتاقک رشد منتقل و بر روی شیکر با دور آرام (100 rpm) قرار داده شدند. ساقهها در این محیط برای 7 روز رشد کردند و بعد در سه تکرار از هر ظرف کشت برای آزمایشها جمع آوری شدند.
اندازهگیری وزن تر و وزن خشک ساقههای گیاه: وزن تر گیاهان پس از یک هفته رشد در غلظتهای مختلف نیترات نقره، پس از خارج کردن گیاهان از محیط کشت و خشک کردن آب اضافی نمونهها روی کاغذ صافی اندازهگیری شد. بهمنظور اندازهگیری وزن خشک، نمونهها داخل پاکتهای کاغذی، به مدت 72 ساعت در آون 70 درجه سانتیگراد قرار داده شدند.
اندازهگیری رنگیزههای فتوسنتزی: برای اندازهگیری کلروفیلها از روش Arnon (5) استفاده شد. 05/0 گرم از بافت تازه گیاهان با استفاده از استون 80 درصد در محیطی تاریک بر روی یخ درون هاون چینی سائیده شد. عصاره حاصل برای 3 دقیقه در دمای 4 درجه سانتیگراد، با دور rpm 4000 سانتریفیوژ شد. سوپرناتانت حاصل به کوت منتقل و جذب آن در طول موجهای 645 و 663 نانومتر در دستگاه اسپکتروفتومتر (مدل JENWAY 6300) خوانده شد. سپس میزان کلروفیل a و کلروفیل b بر حسب میلیگرم در هر گرم وزن تر بافت گیاهی طبق روابط 1 و 2 محاسبه گردید.
Chlorophyll a = {(12.7 × D 663) – (2.69 × D 645)} × V /1000 × W رابطه 1
Chlorophyll b = {(22.9 × D 645) – (4.93 × D 663)} × V /1000 × W رابطه 2
D= جذب نوری، V= حجم نهایی عصاره (میلیلیتر)، W= وزن بافت (گرم)،
اندازهگیری میزان H2O2 : برای اندازهگیری H2O2 از روش Alexieva و همکاران (3) استفاده شد. برای عصارهگیری 05/0 گرم بافت تازه گیاه در هاون سرد شده با 5/1 میلیلیتر TCA (تریکلرواستیکاسید) 1/0 درصد سائیده شد. عصاره تهیه شده به مدت 15 دقیقه با سرعت g 12000 در دمای 4 درجه سانتیگراد سانتریفیوژ شد. 500 میکرولیتر از عصارهها با 500 میکرولیتر بافر فسفات (7pH = ) و 1 میلیلیتر محلول KI 1 مولار ترکیب و در طول موج 390 نانومتر خوانده شد.
اندازهگیری میزان پراکسیداسیون لیپید غشاء: برای اندازهگیری پراکسیداسیون لیپید غشاء از روش Heath و Packer (12) استفاده شد. ابتدا 025/0 گرم از بافت اندام هوایی در 5 میلیلیتر TCA 1/0درصد کاملاً هموژنیزه و یکنواخت گردید. مخلوط هموژنیزه در g10000 به مدت 5 دقیقه سانتریفیوژ شد. به یک میلیلیتر محلول رویی حاصل 4/5 میلیلیتر TCA 20 درصد حاوی تیوباربیتوریکاسید 5/0 درصد اضافه شد. مخلوط به مدت 30 دقیقه در دمای 95 درجه سانتیگراد در حمام آب گرم قرار گرفت و بعد به سرعت روی یخ سرد شد. مخلوط حاصل در g10000 به مدت 10 دقیقه سانتریفیوژ شد و جذب محلول رویی حاصل با دستگاه اسپکتروفتومتر در طول موج 532 نانومتر خوانده شد و مقدار جذب غیر اختصاصی در 600 نانومتر از این مقدار کسر گردید. میزان مالوندآلدهید با استفاده از ضریب خاموشی mM-1 cm-1155 محاسبه شد.
عصارهگیری و اندازهگیری فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان: 05/0 گرم از بافت تازه گیاهان به همراه کمی ازت مایع درون هاون، روی یخ سائیده شدند. سپس 1 میلیلیتر از بافر استخراج آنزیم (50 میلی مولار بافر فسفات سدیم با 8/7=pH) به آنها اضافه گردید و همچنان روی یخ سائیده شد. عصاره حاصل به مدت 20 دقیقه، در دمای 4 درجه سانتیگراد و با دور rpm 13000 سانتریفیوژ شدند. از محلول رویی برای اندازهگیری فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان استفاده گردید.
فعالیت آنزیم کاتالاز: 50 میکرولیتر از عصاره آنزیمی و 950 میکرولیتر از محلول واکنش حاوی mM 10 آب اکسیژنه در سالینبافرفسفات (PBS) افزوده شد و منحنی کاهش جذب نوری در مدت 120 ثانیه در طول موج 240 نانومتر رسم گردید (1). میزان فعالیت آنزیم کاتالاز با استفاده از رابطه 3 محاسبه شد.
EA= {∆OD×(1000/A)×B}/EC×C رابطه 3
EA= میزان فعالیت آنزیم بر حسب واحد (احیای یک میلیمولار پراکسیدهیدروژن در دقیقه) در گرم وزن تر برگ، ∆OD= تغییرات میزان جذب، A= مقدار نمونه، B= مقدار بافر استخراج، EC= ضریب خاموشی معادل 039/0 میکرومول بر سانتیمتر، C= وزن بافت تر
فعالیت آنزیم سوپراکسید دیسموتاز: سنجش فعالیت این آنزیم با استفاده از روش Beyer و Fridovich (7) انجام شد. طبق این روش 1 میلیلیتر مخلوط واکنش و 20 میکرولیتر عصاره آنزیمی به همراه 10 میکرولیتر ریبوفلاوین (004/0 درصد) در لوله آزمایش ریخته شد. مخلوط بهدست آمده برای 7 دقیقه در یک محفظه دارای دو لامپ فلورسنت 20 وات قرار داده شد. افزایش در جذب بهواسطه تشکیل فورمازان در طول موج 560 نانومتر قرائت شد. فعالیت آنزیم با تعیین درصد ممانعت در دقیقه محاسبه گردید. 50 درصد ممانعت برابر با 1 واحد فعالیت آنزیم در نظر گرفته شد.
فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز: برای اندازهگیری فعالیت این آنزیم 625 میکرولیتر بافر سالین فسفات (50 میلی مولار، 8/7=pH) حاوی EDTA (2/0 میلی مولار)، 50 میکرولیتر H2O2 (250 میلی مولار)، 175 میکرولیتر اسید آسکوربیک (5/0 میلی مولار)، 50 میکرولیتر آلبومین سرم گاوی (g/mlµ 50) و 100 میکرولیتر از نمونه مخلوط گردید و در طول موج 290 نانومتر خوانده شد. تنظیمات دستگاه به صورت کینتیک در طول موج 290 نانومتر به مدت 60 ثانیه بود (25). بعد از خواندن میزان فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز با کمک رابطه 3 محاسبه گردید.
EC= ضریب خاموشی برابر 8/2 میکرومول بر سانتیمتر
فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز: اندازهگیری فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز با استفاده از روش Lin و Kao (20) انجام شد. طبق این روش 3 میلیلیتر مخلوط واکنش شامل بافر فسفات 50 میلیمولار با 7pH= ، 35/3 میکرولیتر گایاکول 9 میلیمولار، 51/4 میکرولیتر پراکسید هیدروژن 19 میلیمولار و 50 میکرولیتر عصاره آنزیمی بود. کینتیک جذب در طول موج 470 نانومتر در دستگاه اسپکترفوتومتر در طول 1 دقیقه اندازهگیری شد. ضریب خاموشی، 6/26 میلیمول بر سانتیمتر در نظر گرفته شد. میزان فعالیت آنزیم با استفاده از رابطه 3 محاسبه شد.
فعالیت آنزیم گلوتاتیون ردوکتاز: این اندازهگیری طبق روش Foyer و Halliwell (20) انجام شد. 250 میکرولیتر بافر پتاسیم فسفات 100 میلیمولار 8/7 = pH، 120 میکرولیتر NADPH 1 میلیمولار، 50 میکرولیتر گلوتاتیون اکسید شده 10 میلیمولار و 480 میکرولیتر آب مقطر مخلوط شدند. به مخلوط واکنش حاصل 100 میکرولیتر عصاره آنزیمی افزوده و مصرف NADPH در یک دقیقه در طول موج 340 نانومتر در دستگاه اسپکتروفتومتر با مد کینتیک خوانده شد. فعالیت آنزیم گلوتاتیون ردوکتاز با استفاده از رابطه 3 محاسبه گردید. EC= ضریب خاموشی معادل 2/6 میلیمول بر سانتیمتر در نظر گرفته شد.
اندازهگیری پرولین: اندازهگیری میزان پرولین به روش Troll و Lindsley (34) انجام شد. در ابتدا 05/0 گرم از بافت تازه گیاه در هاون سرد شده با 1 میلیلیتر اتانول 70 درصد سائیده شد. پس از قرار گرفتن عصاره حاصل در 4 درجه سانتیگراد برای 24 ساعت، به مدت 5 دقیقه در g14000 سانتریفیوژ شد. 250 میکرولیتر از محلول رویی، با 470 میکرولیتر اتانول 70 درصد و 1 میلیلیتر مخلوط واکنش رقیق گردید و از این محلول برای سنجش میزان پرولین استفاده شد. میزان جذب در طول موج 520 نانومتر قرائت گردید و مقدار پرولین به کمک منحنی استاندارد از پیش تهیه شده محاسبه شد.
آزمایشها در قالب طرح کاملاً تصادفی با 3 تکرار اجرا گردید. تجزیه و تحلیل آماری دادهها با استفاده از نرمافزار SAS انجام شد. برای مقایسه میانگین دادهها از آزمون حداقل تفاوت معنیداری (LSD) (05/0>P) استفاده شد و در نهایت نمودارها با نرم افزار اکسل رسم گردید.
نتایج و بحث
بروز لکههای قهوهای و سیاه رنگ روی برگ ساقههای A. annua موجود در محیط کشتهای حاوی تیمار 1 و 2 میلیمولار نیترات نقره، احتمالاً نشاندهنده سمیت شدید نقره در این دو غلظت بود، بنابراین ساقههای نکروزه شده در این دو غلظت برای بررسی تحقیقات مناسب تشخیص داده نشدند. به همین دلیل بررسی شاخصهای فیزیولوژیک و بیوشیمیایی فقط در غلظتهای 001/0، 01/0 و 1/0 میلی مولار انجام شد.
نتایج حاصل از تجزیه واریانس اثر نیترات نقره بر صفات اندازه گیری شده A. annua در جدول 1 آمده است.
جدول 1- تجزیه واریانس (مقادیر میانگین مربعات) تأثیر نیترات نقره بر صفات مختلف در ساقههای A. annua
منابع تغییر |
درجه آزادی |
نسبت وزن تر/ وزن خشک |
کلروفیل a |
کلروفیل b |
H2O2 |
پراکسیداسیون لیپید |
کاتالاز |
آسکوربات پراکسیداز |
گایاکول پراکسیداز |
گلوتاتیون ردوکتاز |
سوپر اکسید دیسموتاز |
پرولین |
نیترات نقره |
3 |
*15/5 |
*53/8 |
*19/2 |
*01/53 |
*74/27 |
*28/2379 |
*1/0 |
*56/1 |
*88/15 |
*09/0 |
*96/264 |
خطا |
8 |
04/0 |
38/0 |
34/0 |
95/1 |
04/0 |
33/18 |
0075/0 |
08/0 |
08/0 |
0074/0 |
55/2 |
کل |
11 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
*: بیانگر معنیدار بودن در سطح 05/0 و ns: بیانگر عدم اختلاف معنیدار است.
1- تأثیر نیترات نقره بر نسبت وزن تر/ وزن خشک: طبق نتایج بهدست آمده در این پژوهش، نسبت وزن تر و وزن خشک تنها در غلظت 1/0 میلیمولار نیترات نقره افزایش معنیداری نسبت به شاهد نشان داد (شکل 1). یکی از علتهای مهم آسیب بافتی در گیاهانی که در معرض فلزات سنگین قرار میگیرند، ایجاد تنش اکسیداتیو است. رادیکالهای فعال اکسیژن عمدتاً در کلروپلاست و میتوکندری تولید میشوند و آسیبهای اکسیداتیو بر چربیها، پروتئینها و اسیدهای نوکلئیک وارد میکنند، در نتیجه سبب اختلال در متابولیسم طبیعی سلول، اختلال در فرایندهای مهم تنفس و فتوسنتز و کاهش رشد میشوند (22). با توجه به افزایش نسبت وزن تر به وزن خشک ساقهها در غلظت 1/0 میلیمولار نیترات نقره احتمالاً الیسیتیشن مورد نظر محتوای آب ساقههای گیاه A. annua را در اثر تخریب غشاها افزایش داده است.
شکل 1- تأثیر غلظتهای مختلف نیترات نقره بر نسبت وزن تر به وزن خشک اندام هوایی درA. annua. (حروف غیر یکسان بیانگر اختلاف معنیدار میانگینها در سطح 05/0 با آزمون LSD است)
2- تأثیر نیترات نقره بر میزان کلروفیل a و کلروفیل b: در غلظت 001/0 میلیمولار نیترات نقره، میزان کلروفیل a و کلروفیل b افزایش معنیداری نسبت به شاهد یافت و در غلظت 1/0 میلیمولار نیترات نقره، میزان کلروفیل a کاهش معنیداری نشان داد (شکل 2). کلروفیل نقش یگانه و اثرگذار در زندگی گیاهان عالی دارد. از آنجایی که تجزیه کلروفیل پاسخ عمومی به تنش است، میتوان نتیجه گرفت که تغییرات در میزان کلروفیل یکی از شاخصهای مهم تنش محیطی است و تحمل گونهها به تنش را توصیف میکند. جانشینی یون Mg2+ در مولکول کلروفیل با فلزات سمی مشخص مانند مس، روی، کادمیوم یا جیوه در طی تنشهای فلزات سنگین در گیاهان عالی نشان داده شده است که باعث کاهش فتوسنتز میشود (22)، به طوری که ساختار و فعالیت مولکول کلروفیل و همچنین فعالیت آنزیم ریبولوز 1 و 5- بیس فسفات-کربوکسیلاز اکسیژناز را تغییر میدهد. همچنین در زنجیره انتقال الکترون فتوسنتزی و دسترسی به واسطهها (از جمله سیتوکروم b6f و b559) اختلال ایجاد میکند. Schat و همکاران (31) نشان دادند که اضافه کردن فلزات سنگین کروم (25، 50 و 100 میکرومولار) و نقره (5، 10 و 15 میکرومولار) به سلولهای سالم سیانوباکتریوم و اسپیرولیناپلاتنیس باعث دگرگونی در فعالیت زنجیره انتقال الکترون و فتوسیستم II میشود. همچنین فلزات سنگین معمولاً از طریق مهار فعالیت آنزیم، فرایندهای متابولیکی را ممانعت میکنند، بنابراین کاهش میزان کلروفیل در اثر فلزات سنگین به علت مهار فعالیت آنزیمهای بیوسنتز کلروفیل میباشد. برای مثال کادمیوم با مهار فعالیت آنزیم پروتوکلروفیلید ردوکتاز با واسطه برهمکنش با گروههای سولفیدریل و نیز مهار آنزیم آمینولولینیکاسید (ALA) سنتاز باعث کاهش کلروفیل میشود (35). به علاوه نتایج نشان داد که یونهای فلزات سنگین وابسته به غلظت بر روی انتقال الکترون در جایگاههای چندگانه از قبیل مهار آنزیم شکست آب (واقع در جایگاه اکسیداسیون فتوسیستم II) اثر میگذارند و انتقال انرژی را تغییر میدهند. Huang و Tao (17) گزارش کردند که محتوای کلروفیل در حضور غلظت بالای فلز مس در جوانههای گیاه Pinus sylvestris کاهش یافت و این کاهش در محتوای کلروفیل میتواند ناشی از پراکسیداسیون غشاهای کلروپلاست توسط مس باشد. از آنجاییکه کلروپلاستها غشاهای بسیار حساس دارند، احتمال دارد که فلزات سنگین از جمله نقره بر سلامت غشای پلاستیدها و بر فتوسنتز اثر بگذارند. از علل دیگر کاهش کلروفیل توسط فلزات سنگین تأثیر بر جمع شدن در مولکولهای کلروفیل در کمپلکسهای رنگدانه – پروتئین فتوسیستمها و مهار سنتر پروتئین سیستم جمعآوری کننده نور II (LHC II) در مرحله نسخه برداری است که منجر به فتواکسیدشدن کلروفیل تازه تشکیل شده میگردد (15). Pandey و Sharma (26) نشان دادند که غلظتهای بالای نیکل، کادمیوم و کبالت منجر به کاهش قابل توجه در غلظت کلروفیل a و b در گیاه کلم شده است.
همچنین از آنجایی که محتویات کلروفیلی گیاه، یکی از شاخصهای عملکرد هورمون اتیلن است، بررسی تأثیر نیترات نقره (به عنوان یک مهارکننده دریافت اتیلن توسط گیرندههای آن در گیاه) بر میزان کلروفیل کل، به صورت غیر مستقیم اطلاعاتی درباره تأثیر اتیلن بر کلروفیل و فرایند فتوسنتز فراهم میآورد. یونهای نقره با جانشینی در جایگاه فعال گیرندههای اتیلنی موجود در غشاء پلاسمایی سلولها و یا شبکه اندوپلاسمی بهجای کوفاکتور مس، میتوانند گیرندهها را غیر فعال و مانع از پاسخ به اتیلن در گیاه شوند (3). بنابراین افزایش غلظت کلروفیلهای a و b در غلظت 001/0 میلیمولار نیترات نقره به طور واضح تأثیر آن را به عنوان بازدارنده فعالیت اتیلن نشان میدهد. در نتیجه ساقههای تیمار شده با 001/0 میلیمولار نیترات نقره با افزایش میزان کلروفیل میتواند میزان تثبیت دیاکسیدکربن و متعاقباً فتوسنتز را افزایش دهند و باعث افزایش بیوماس گیاه شوند. کاهش میزان کلروفیل تحت تأثیر هورمون اتیلن در شرایط کشت in vitro گزارش شده است و مشخص شده که میان سطح اتیلن موجود در ظروف کشت بافت و سطح کلروفیل اندازهگیری شده رابطهای معکوس وجود دارد (19) که این کاهش توسط کاربرد بازدارندههای بیوسنتز یا فعالیت اتیلن مهار شده است.
|
|
الف |
ب |
شکل 2- تأثیر غلظتهای مختلف نیترات نقره بر مقادیر کلروفیل a (الف) و کلروفیل b (ب) در برگ A. annua. (حروف غیر یکسان بیانگر اختلاف معنیدار میانگینها در سطح 05/0 آزمون LSD است)
3- تأثیر نیترات نقره بر میزان H2O2 و پراکسیداسیون لیپید غشاء: میزان H2O2 و پراکسیداسیون لیپید غشاء نمونههای تحت تیمار نیترات نقره در تمام غلظتها افزایش معنیداری نسبت به شاهد نشان داد (جدول 2). یکی از تغییرات بیوشیمیایی که در گیاه تحت تنش ایجاد میشود تجمع گونههای فعال اکسیژن است که محصول اجتناب ناپذیر متابولیسم طبیعی سلول میباشد. کلروپلاست و میتوکندری سلولهای گیاهی از مهمترین تولیدکنندههای گونههای فعال اکسیژن هستند. الکترونهای نشتیافته از زنجیره انتقال الکترون می توانند با اکسیژن مولکولی حاصل از متابولیسم طبیعی گیاه، ترکیب شده و تولید گونههای فعال اکسیژن نمایند. این گونههای اکسیژن سمی و بسیار واکنش پذیرند و در غیاب مکانیسمهای حفاظتی میتوانند متابولیسم طبیعی سلول را به میزان زیادی مختل کنند. این رادیکالها از طریق پراکسیداسیون لیپیدها و در نتیجه تخریب غشاء، تخریب پروتئینها، غیر فعال کردن آنزیمها، از بین بردن رنگیزهها و اختلال در عملکرد DNA، تنش ثانویه اکسیداتیو ایجاد میکنند که منجر به خسارتهای جدی به ساختارهای سلولی و گیاه میگردد (29). طبق گزارشهای Hsu و Kao (14) تنش کادمیوم باعث افزایش مقدار H2O2 در برگهای برنج شده است. همچنین افزایش میزان پراکسید هیدروژن به عنوان شاخص تنش اکسیداتیو تحت تیمار سرب در گیاهچه های یونجه گزارش شده است (12). در این تحقیق افزایش میزان H2O2 احتمالاً به دلیل برهم خوردن تعادل بین تولید رادیکالهای آزاد و فاکتورهای مؤثر در حذف آنها در حضور فلز سنگین نقره است. همچنین ممکن است الکترونهای نشت کرده از زنجیره انتقال الکترون افزایش یافته، با اکسیژن مولکولی ترکیب شده و تولید گونههای فعال اکسیژن بیشتر از نمونه شاهد شده باشد.
در شرایط تنشزا فرایندهای مخرب غشاء فعال شده و منجر به پراکسیداسیون لیپیدهای غشاء میشوند. به عنوان مثال رادیکالهای آزاد تنش اکسیداتیو حاصل از شرایط محیطی نامناسب باعث آسیب رساندن به لیپیدها و اسیدهای چرب غشایی شده و رادیکالهای لیپید و پراکسی و هیدروکسی پراکسی تولید میکنند. رادیکالهای جدید تولید شده میتوانند واکنشهای اکسیداسیون لیپیدها را تسریع کنند. گزارش شده است که با افزایش میزان پراکسیداسیون لیپید در گیاهان تحت تنش کادمیوم، فعالیت آنزیم لیپوکسیژناز افزایش مییابد. این آنزیم اکسیژناسیون اسیدهای چرب غیراشباع و با زنجیره طولانی را کاتالیز میکند (29). پراکسیداسیون لیپیدهای غشاء، نفوذ پذیری غشاء را تحت تأثیر قرار میدهد، به علاوه اکسیژناسیون اسیدهای چرب غیر اشباع پیامآورهای ثانویهای را برای مقابله با تنش تولید میکنند. Gallego و همکاران (11) نشان دادند که تیمار برگهای آفتابگردان با فلزات سنگین آهن، مس و کادمیوم منجر به افزایش پراکسیداسیون لیپیدی و فعالیت آنزیم لیپواکسیژناز میشود. در این تحقیق نیز میزان پراکسیداسیون لیپیدهای غشاء نسبت به شاهد افزایش یافت که این مشاهده با توجه به افزایش H2O2 در تمام غلظتهای نیترات نقره قابل توجیه میباشد. در واقع در اثر تولید اکسیژنهای فعال در حضور نیترات نقره، میزان پراکسیداسیون لیپیدهای غشاء افزایش مییابد.
جدول 2- تغییرات میزان H2O2 و پراکسیداسیون لیپید نسبت به افزایش غلظت نیترات نقره در ساقههای A. annua
|
کنترل |
mM 001/0 |
mM 01/0 |
mM 1/0 |
H2O2 |
44/1 ± 07/14 c |
59/1 ± 01/18 b |
64/1 ± 27/24 a |
72/0 ± 07/19 b |
پراکسیداسیون لیپید |
2/0 ± 9/2 c |
2/0 ± 73/8 b |
2/0 ± 7/8 b |
2/0 ± 42/9 a |
4- تأثیر نیترات نقره بر فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان: فعالیت آنزیم کاتالاز تحت تیمار نیترات نقره در تمام تیمارها نسبت به شاهد افزایش معنیداری داشت (شکل 3- الف). فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز در تیمار 01/0 و 1/0 میلیمولار به ترتیب 04/25% و 43/30% نسبت به شاهد کاهش معنیداری یافت (شکل 3- ب). فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز تنها در تیمار 1/0 میلیمولار 69/53% نسبت به شاهد کاهش معنیداری نشان داد (شکل 3- ج). فعالیت آنزیم گلوتاتیون ردوکتاز در تیمار 01/0 میلیمولار، 89/44% افزایش و در تیمار 1/0 میلیمولار، 93/53% کاهش معنیداری نشان داد (شکل 3- د). همچنین فعالیت آنزیم سوپراکسید دیسموتاز در تیمارهای 001/0 و 01/0 میلیمولار به ترتیب 33/13% و 51/11% نسبت به شاهد کاهش معنیداری یافت (شکل 3- ه). همان طور که ذکر شد تنش فلزات سنگین افزایش تولید O2- و H2O2 را در گیاهان به همراه دارد. افزایش فعالیت آنزیمهای کاتالاز و گایاکول پراکسیداز توسط نیترات نقره نشان میدهد که این آنزیمها با همکاری هم در حذف پراکسید هیدروژن عمل میکنند و نیز دلیلی بر شروع دفاع آنتیاکسیدان میباشد، به طوری که به عنوان مثال پاسخ ناکافی یک آنزیم به نیترات نقره توسط افزایش فعالیت آنزیمی دیگر جبران میشود. کاتالاز در پراکسیزوم سلولهای گیاهی حضور دارد و مهمترین آنزیم برای حذف پراکسید هیدروژن است. این آنزیم سلولها را از اثرات سمی پراکسید هیدروژن از طریق تجزیه آنها به اکسیژن مولکولی و آب، بدون تولید رادیکالهای آزاد حفاظت میکند (6). طبق نتایج حاصل توسط Schutzendubel و همکاران (32)، اضافه کردن کادمیوم 50 میکرومولار به کشت هیدروپونیک ریشههایPinus sylvestris در 6 ساعت اول باعث افزایش فعالیت کاتالاز، آسکوربات پراکسیداز و سوپراکسیددیسموتاز میشود و بعد از 12 ساعت کاهش مییابد، در حالی که در 6 ساعت اول باعث کاهش فعالیت گلوتاتیون ردوکتاز میشود و بعد از 12 ساعت باعث افزایش فعالیت این آنزیم نسبت به شاهد میشود. همچنین افزایش فعالیت آنزیم های گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز تحت تنش سلنیم و بدنبال آن کاهش تنش اکسیداتیو در گیاهچه های گندم گزارش شده است (13). در این تحقیق با توجه به اینکه فعالیت آنزیم کاتالاز در تمام تیمارها افزایش یافته میتوان نتیجه گرفت که حذف اکسیژنهای فعال بیشتر از سایر آنزیمها بر عهده کاتالاز بوده و پاسخ ناکافی سایر آنزیمها را جبران کرده است. فعالیت آنزیم گلوتاتیون ردوکتاز تنها در تیمار 01/0 میلیمولار نیترات نقره افزایش معنیدار یافت که احتمالا به فعالیت آنزیم کاتالاز کمک شده است. سایر آنزیمها در تمام تیمارها یا تغییر معنیداری نداشته یا کاهش یافتند. تغییرات ایجاد شده در فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان ممکن است در ارتباط با تنش اکسیداتیو وارده به گیاه در اثر تجمع ROSها در پی تیمار فلز سنگین نقره و همچنین تشدید فرایند پراکسیداسیون لیپیدهای همسو با این تنش باشد. در کل افزایش فعالیت آنزیمی میتواند برابر با افزایش سرعت سمیتزدایی ROSها در گیاه باشد. احتمالاً از علتهای کاهش فعالیت آنزیمها میتواند تشدید اثرات مخرب نقره و یا ROSها القا شده بر ساختار و فعالیت این آنزیمها باشد. مشخص شده که نقره میتواند جانشین فلزاتی که به عنوان کوفاکتور آنزیمی در ساختار آنزیم قرار دارند، گردد و به این ترتیب بر فعالیت آن اثر منفی داشته باشد (28).
الف |
ب |
ج |
د
|
ه
|
شکل 3- تأثیر غلظتهای مختلف نیترات نقره بر فعالیت آنزیم کاتالاز (الف)، آسکوربات پراکسیداز (ب)، گایاکول پراکسیداز (ج)، گلوتاتیون ردوکتاز (د) و سوپراکسیددیسموتاز (ه) در ساقههایA. annua. (حروف غیر یکسان بیانگر اختلاف معنیدار میانگینها در سطح 05/0 آزمون LSD است)
5- تأثیر نیترات نقره بر میزان پرولین: میزان پرولین در تمام غلظتهای نیترات نقره افزایش چشمگیری نسبت به شاهد نشان داد (شکل 4). اسیدآمینه پرولین تحت شرایط نامطلوب محیطی در گیاه تجمع مییابد. پرولین در محدوده وسیعی از گونههای گیاهی تحت تنشهای مختلفی مانند خشکی، شوری، دما، نور زیاد و فلزات سنگین مجتمع میشود (21).
تنشها از جمله تنش فلزات سنگین، با سرعت بخشیدن به پیری برگ، میزان پرولین را افزایش میدهند. Shah و همکاران (33) دلیل افزایش پرولین در گیاه تیمار شده با کادمیوم را تلاش برای حفظ اسیدیته سیتوزولی و یا راهی برای حفاظت آنزیمی گیاهان تحت تنش توسط این اسیدآمینه اعلام کردند. Schat و همکاران (31) دلیل افزایش پرولین تحت تیمار کادمیوم در گیاه Silene vulgaris را کمبود آب مؤثر از تنش کادمیوم، نه اثر مستقیم کادمیوم بر این اسید آمینه دانستند. تجمع پرولین در زمان تنش، حاصل تغییر در سرعت بیوسنتز و تجزیه این اسیدآمینه میباشد. در این حالت میزان فعالیت آنزیمهای مربوطه، همچنین غلظتهای مؤثر پیش سازها و فراوردههای آن مهم است (32). در این تحقیق میتوان پیشبینی کرد که افزایش میزان پرولین در تمام غلظتهای نیترات نقره به جلوگیری از آسیب اکسیداتیو القا شده توسط نیترات نقره کمک کرده است.
شکل 4 - تأثیر غلظتهای مختلف نیترات نقره بر میزان پرولین در ساقههایA. annua. (حروف غیر یکسان بیانگر اختلاف معنیدار میانگینها در سطح 05/0 آزمون LSD است)
نتایج این پژوهش نشان میدهد که نقره موجود در ساقهها باعث تجمع ترکیباتی مثل پراکسید هیدروژن شده که به عنوان یک مولکول پیام رسان عمل کرده و باعث القای دفاع آنتیاکسیداتیو در برگها میشود. افزایش فعالیت آنزیم کاتالاز با افزایش تنش نقره نشاندهنده شرکت فعال آنزیم در دفاع اکسیداتیو ناشی از نقره است، که به منظور بهبود مقاومت گیاه درمنه یکساله علیه تنش فلزات سنگین، ایجاد لاینهای ترانسژنیک کاتالاز این گیاه توصیه میگردد.
سپاسگزاری
این پروژه با حمایت معاونت پژوهشی دانشگاه شهرکرد انجام شده است، که بدین وسیله قدردانی میگردد. همچنین نویسندگان مقاله از مسئولان مرکز ملی ذخایر ژنتیکی و زیستی ایران به دلیل در اختیار گذاشتن نمونههای بذر گیاه آرتمیزیا تشکر میکنند.