The effect of endophytic bacteria (Bacillus subtilis POE26) on growth factors and proline and auxin contents of two cultivars of wheat (Triticum aestivum L.) under salinity stress

Document Type : Research Paper

Authors
1 biology department, Sciences faculty, lorestan university, khorramabd Iran
2 lorestan university
3 faculty of sciences Buali universiry
4 Buali university
Abstract
In order to investigate the effect of salinity stress on the growth factors, proline and auxin contents of two cultivars of rainfed wheat (Triticum aestivum L.), the wheat seeds were pretreated with Bacillus subtilis POE26, then the seedlings were planted in pots in controlled laboratory conditions and were irrigated with Hoagland nutrient solution containing 6 different Sodium chloride (NaCl)levels. The plants were harvested at the 4 leaves stage and growth factors and proline and auxin contents were assessed. The results showed a significant difference in the growth of aerial parts between pretreated and non-pretreated plants in different salinity levels. The bacteria increased the germination of seeds only at the high NaCl concentration. Pretreatment of wheat seeds with bacteria increased the auxin content of the plants. The role of bacteria in changing root length was without the involvement of proline. In conclusion, pretreatment of wheat seeds with auxin producing bacteria altered the growth factors, and especially increased the leaf area under salinity stress.

Keywords

Subjects


تاثیر باکتری اندوفیت باسیلوس سوبتیلیس POE26 بر فاکتورهای رشد و محتوی پرولین و اکسین در دو رقم گندم نان تحت تنش شوری

رامتین پاکزاد1، مریم نصراصفهانی1*، رویا کرمیان2 و جلال سلطانی3

1 ایران، لرستان، دانشگاه لرستان، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی

2 ایران، همدان، دانشگاه بوعلی سینا، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی

3 ایران، همدان، دانشگاه بوعلی سینا، دانشکده کشاورزی، گروه حفاظت گیاهی

تاریخ دریافت: 27/11/1400          تاریخ پذیرش: 26/01/1401

چکیده

بمنظور بررسی اثرات شوری بر فاکتورهای رشد و محتوای پرولین و اکسین دو رقم تجارتی گندم دیم نان (میهن و حیدری) در مرحله گیاهچه ، صفات درصد جوانه زنی، طول و وزن تر و خشک قسمت هوایی و ریشه، سطح برگ و محتوای اکسین و پرولین در غیاب و حضور باکتری اندوفیت باسیلوس سوبتیلیس (Bacillus subtilis POE26) اندازه گیری شدند. دانه‌های گندم با باکتری تلقیح شدند، سپس جوانه ها در شرایط آزمایشگاهی کنترل‌شده در گلدان کاشته و با محلول غذایی هوگلند حاوی 6 سطح مختلف کلرید سدیم (NaCl) آبیاری شدند. اثر رقم بتنهایی و باکتری در غلظتهای پایین نمک، بر روی درصد جوانه زنی معنی دار نبود ولی در غلظتهای بالا وجود باکتری باعث افزایش درصد جوانه زنی گردید. شوری بتنهایی باعث افزایش طول ریشه و شوری و باکتری در کنار هم باعث کاهش طول ریشه گردید. ایفای نقش باکتری در تغییر طول ریشه بدون دخالت پرولین بود. در نهایت مشخص شد که تیمار باکتری، بر مراحل رشدی گیاه تحت تنش شوری تاثیرگذار است و افزایش سطح برگ در هر دو رقم مورد مطالعه می تواند بدلیل تولید اکسین توسط باکتری باسیلوس سوبتیلیس باشد. درنهایت بر مبنای صفات مورد بررسی، رقم حیدری مقاومتر از رقم میهن بود.

واژه های کلیدی: گندم، تنش شوری، باکتری اندوفیت، فاکتور رشد

* نویسنده مسئول، تلفن:09131103870 ، پست الکترونیکی: esfahani.m@lu.ac.ir

مقدمه

 

در قرن بیست و یکم، سوءتغذیه یکی از نگرانی های عمده جهانی است و بنابراین، برای تغذیه جمعیت دائما در حال رشد، نیاز به کشاورزی پایدار افزایش یافته است. تخمین زده شده است که 36 درصد از جمعیت جهان برای غذا و منبع درآمد به کشاورزی وابسته هستند. بهرحال، کشاورزی عمدتاً تحت تأثیر تغییرات آب و هوایی است که باعث آسیب‌پذیری امنیت غذایی جهانی می‌شود (13). شوری بالای خاک یک نگرانی جهانی مهمی ایجاد کرده است که تولید پایدار محصولات زراعی از جمله گندم و برنج را در بیشتر مناطق جهان از جمله ایران مختل می­کند. علاوه بر این، کمبود آب، گرمایش جهانی و بالا آمدن سطح آب دریاها باعث تشدید شوری خاک­های کشاورزی شده است بطورری­که سرعت گسترش شوری حدود 5/1 میلیون هکتار در هر سال تخمین زده می­شود(20). بدلیل مقاوم نبودن بسیاری از واریته­های زراعی موجود در برابر شوری، روش­های کلاسیک غربال­گری موفقیت­های محدودی داشته اند و این ژنوتیپ های شناسایی شده به منطقه جغرافیایی خاص تعلق دارند و نتوانسته­اند در مکان های مختلف تحت شرایط تنش شوری زنده بمانند(23). شوری خاک باعث ایجاد تنش های اسمزی و یونی در گیاهان می­شود که رشد گیاه را مهار می­کند (16). شناسائی روش­هائی که موجب تخفیف اثر تنش شوری شده و تا حد ممکن از افت عملکرد گیاهان جلوگیری نمایند، می­تواند یکی از روش­های مقابله با این معضل باشد (21). با توجه به پرهزینه بودن تکنیک‌های مهندسی ژنتیک، استفاده از میکروارگانیسم‌های مفید برای افزایش تحمل به شوری در گیاهان، یک رویکرد جایگزین امکان‌پذیر برای بازیابی زمین‌های مستعد شوری است(11). میکروارگانیسم­های ساکن در خاک بطور قابل توجهی به ارتقای رشد گیاه و تحمل به شوری کمک می­کنند. این میکروب‌ها روابط خاک-آب-گیاه را تقویت می‌کنند، سیگنال‌های هورمونی گیاهی را دستکاری می‌کنند و چندین مکانیسم دیگر را فعال می‌کنند که بصورت یکپارچه برای افزایش تحمل به نمک و تنش خشکی در گیاهان کار می‌کنند(14و 15). اندوفیت­های باکتریایی در بافت­های زنده گیاهی ساکنند، بدون آن­که به گیاه صدمه ای بزنند. آنها قادرند همزیستی داخلی با گیاه برقرار نموده و برای گیاه یک محیط سودمند اکولوژیکی را ایجاد کنند که بواسطه آن نسبت به تنش­های محیطی متحمل شده و یا سبب بهبود و افزایش رشد گیاه شوند( 19 و 29) . یکی از راسته­های باکتری­های اندوفیت، راسته Bacillals است که وجود سویه­های دیگری از جنس Bacillus از این راسته، بعنوان باکتری اندوفیت در گیاهان دیگری بجز گندم نیز گزارش شده است(17). Robinson و همکاران (2016) باکتریهای اندوفیت گیاه گندم را مطالعه و وجود جنس Bacillus را در بین باکتریهای همزیست با گندم گزارش کردند (28).  Lastochkina و همکاران(2017) خصوصیات مربوط به برخی اثرات سویه دیگری از Bacillus subtilis از این راسته از جمله تاثیر مثبتی که بر روی تنش خشکی طی همزیستی با ریشه­های ارقام دیگری گندم دارند را گزارش کرده­اند (18). بهر حال، سوالات بزرگی در درک مکانیسم‌های میکروبی برای ارتقای رشد گیاه وجود دارد مانند این که چگونه اندوفیت ها تنش شوری را در گیاهان بهبود می بخشند؟ و یا چه نوع تغییرات فیزیولوژیکی در گیاهان در شرایط شوری رخ می دهد؟

در ایران وسعت خاک­های شور قابل­توجه و از معضلات جدی کشاورزی است. در سال زراعی 98 -1397 سطح محصولات زراعی حدود 12 میلیون هکتار بوده که از این مقدار حدود 8/51 اراضی با کشت آبی و 2/48 درصد اراضی با کشت دیم بوده است(1). نزدیک به 50 % این سطح زیرکشت به درجات مختلف با شوری، قلیایی بودن و غرقابی بودن روبرو هستند. گندم (Triticum aestivum L.) اساسی­ترین محصول در الگوی غذایی ایرانیان است و جایگـــاه ویـــژه­ای دارد، بـــگونـــه­ای کـــه همـــواره در سیاستگذاری­های کشاورزی محور اصلی بـوده اسـت. سطح زیرکشت گندم در کشور حدود 6 میلیون هکتار است که حدود ۲ میلیون هکتار کشت گندم آبی و ۴ میلیون هکتار گندم دیم می­باشد. گندم دیم با تولید حدود 5/5 میلیون تن و سهم 5/71 درصد از کل میزان تولید محصولات زراعی دیم و گندم آبی که میزان تولید آن حدود 2/8 میلیون تن و سهم 9/10 درصد از کل میـزان تولیـد محصولات زراعی است، سهم قابل توجهی از تولیدات کشاورزی کشور را بخود اختصاص داده­اند(1). با توجه به اهمیت بارز گندم در تغذیه انسان ، لزوم شناسایی راهکارهایی موثر در بهبود تحمل شرایط تنش شوری ضروری است زیرا ارزش غذایی گیاه علاوه بر کنترل ژنتیکی، تحت تأثیر شرایط محیطی است. در این پژوهش، تاثیر همزیستی یک سویه باکتری باسیلوس سوبیتیلیس (Bacillus subtilis POE26) با دو لاین تجارتی گندم نان به نام­های میهن و حیدری در مرحله گیاهچه ای در شرایط تنش شوری مورد بررسی قرار گرفت و با بررسی فاکتورهای رشد، محتوی پرولین و اکسین، میزان تحمل و یا حساسیت این ارقام درمرحله گیاهچه­ای مطالعه شد.

مواد و روشها

ایـن آزمـایش بـمنظـور بررسـی اثـرات تـنش شوری در حضور و عدم حضور باکتری اندوفیت B. subtilis POE26 (30) بر درصد جوانه­زنی، وزن تر ریشه، وزن تر قسمت هوایی، وزن خشک ریشه، وزن خشک قسمت هوایی، سطح برگ و میزان اکسین و پرولین در مرحلـه گیاهچـه­ای گنـدم در پـاییز 1397 در دانشـکده علوم دانشـگاه بوعلی سینا انجام گردید. 2رقم تجـارتی گنـدم دیم نـان بنام­های میهن و حیدری از مرکز تحقیقات جهاد کشاورزی همدان تهیه شده و در 6 سـطح شـوری شـامل صفر(محلول هوگلند پایه بعنوان شاهد)، 15، 30، 50، 100 و 150 میلی­مولار سدیم بصورت آزمـایش فاکتوریـل در قالـب طـرح بلـوک هـای کامـل تصادفی با 3 تکـرار مـورد مطالعـه قـرار گرفتنـد. هـر گلـدان با قطر 11 سانتی­متر و حاوی ماسه شسته شده و استریل بـود. شـرایط دمـایی اتاق رشد بصورت 2± 20 درجه سانتی­گـراد و شدت نور 6000 لوکس و بـمدت 16 سـاعت روشـنایی و 8 سـاعت تـاریکی تنظیم شد. گلدان­ها با غلظت هـای شوری مربوطه آبیاری شدند و هدایت الکتریکی(EC) آب زهکش آنهـا بوسیله ECمتـر دیجیتالی کنترل گردید. آبیـاری گلدان­ها تا مرحله 4 برگـی ادامه پیدا کرد. تمامی بوتـه­هـا هــر گلــدان برداشــت شــده و ریشه و برگ هـر یـک از آنهـا جـدا شدند. باکتری اندوفیت  باسیلوس سوبتیلیس Bacillus subtilis POE26 در مطالعات پیشین از بافت­های شاخه گیاه Thuja orientalis (Cupressaceae) جداسازی شده بود(30).

باکتری­ها در محیط کشت نوترینت براث (NB) کشت داده شدند تا به غلظت حدود 108 CFU برسند. جذب محیط کشت مایع تلقیح شده در طول موج nm 650 در برابر محیط کشت تلقیح نشده، خوانده شد. چگالی نوری مورد قبول بین 1/0 تا 12/0   می­باشد. سپس بذرهای جوانه­زده در محیط استریل به محیط کشت مایع تلقیح شده منتقل و بمدت یک ساعت در شیکر با دور rpm 50-40 مخلوط شدند (31).

سطح برگ چند گیاه از هرگلدان با خط­کش و کاغذ میلیمتری اندازه­گیری و میانگین آن­ها، بعنوان اندازه سطح برگ هرگیاه در نظر گرفته شد. طول ریشه چند گیاه از هرگلدان با خط­کش و کاغذ میلیمتری اندازه گیری و میانگین آن­ها اندازه طول ریشه هرگیاه در نظر گرفته شد. وزن تر برگ و ریشه چند گیاه از هرگلدان با ترازوی دیجیتال با دقـت  یک ده هزارم گرم اندازه­گیری شد. سپس گیاه قطعه قطعه شده و بمدت یک شب در آب مقطر دیونیزه در یخچال 4 درجه سانتیگراد نگهداری شدند. دوباره وزن آنها اندازه گیری و میانگین آن­ها بعنوان وزن هیدراته Hydrated Weight(HW) ثبت گردید. برای اندازه­گیری وزن خشک، بـرگ و ریشه هـر تک بوته جداگانه بـمـدت 72 سـاعت در آون 75 درجه سانتی­گراد قرار داده شد. سپس وزن خشـک بـرگ و وزن خشک ریشه بوسـیله تـرازوی دیجیتـالی بـادقـت یک ده هزارم گرم تعیـین شـد.

سنجش پرولین گیاه بروش Bates و همکاران انجام گرفت(10). 5/0 گرم ماده تر گیاهی با 10 میلی­لیتر محلول 3٪ اسید سولفوسالیسیلیک سائیده شد. از مخلوط همگن حاصل پس از سانتریفوژ در3000 دور در دقیقه، 2 میلی­لیتر برداشته شد و پس از افزودن 2 میلی­لیتر معرف اسیدی نین­هیدرین و 2 میلی­لیتر اسید­استیک خالص در بن­ماری در دما‌ی 90 درجه سانتی­گراد بمدت یک ساعت قرار داده شد. سپس آن‌ها را در حمام آب یخ گذاشته و پس از اضافه نمودن 4 میلی­لیتر تولوئن، 15 تا 20 ثانیه ورتکس شدند، سپس مقدار جذب در طول موج 520 نانومتر توسط اسپکتروفتومتر Photonix مدلAr2017  خوانده شد و مقدار پرولین با استفاده از منحنی استاندارد آن بدست آمد.

ارزیابی این سویه باکتری از نظر توان تولید هورمون اکسین ایندول استیک اسید (IAA) با روش پیشنهاد ی Bric و همکاران انجام شد(12). ابتدا باکتری ها بمدت 48 ساعت در محیط کشت مولرهینتون کشت داده شدند. مقدار 50 میکرولیتر از سوسپانسیون باکتری به 25 میلی لیتر محیط کشت حاوی مقادیر صفر، 50 ، 100 ، 150 و 200 میکروگرم در میلی­ لیتر تریپتوفان اضافه و پس از 24 ساعت، سوسپانسیون خالص باکتری بمدت 10 دقیقه در g 10000 سانتریفیوژ شد. محلول رویی بنسبت 1 به 2 با معرف سالکوفسکی(150 میلی­لیتر اسید سولفوریک غلیظ، 250 میلی­لیتر آب مقطر و 7/5 میلی­لیتر FeCl3.6H2O  نیم مولار)مخلوط گردید. پس از 20 دقیقه نگهداری در دمای اتاق با استفاده از اسپکتروفتومتر Photonix مدل Ar2017 ، مقدار جذب نور در طول موج 535 نانومتر قرائت گردید(25). مقدار تولید هورمون IAA با مقایسه جذب آن با جذب نمودار استاندارد تهیه شده از ایندول استیک اسید محاسبه شد.

آنالیز آماری

آنالیز آماری توسط نرم افزار SPSS ver.18 انجام گردید. مقادیر، میانگین سه تکرار می­باشند. مقایسه میانگین­ها بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن و در سطح P<0.05 و P<0.01 می باشند.

نتایج

نتایج حاصل از مقایسه میانگین داده­های مربوط به ارزیابی درصد و سرعت جوانه­زنی (شکل 1) نشان داد که تاثیر غلظت شوری بر جوانه زنی در هر دو رقم معنادار بود و از غلظت 150 میلی­مولار به بالا جوانه­زنی کاهش یافت و در غلظت 1 مولار به صفر رسید. در غلظت های پایین شوری، تیمار با باکتری تاثیر معناداری بر جوانه زنی نداشت اما در غلظت­های 200 میلی مولار به بالا تیمار با باکتری باعث افزایش جوانه زنی شد.

 

 

شکل 1 - تاثیر تیمار­های شوری و باکتری Bacillus subtilis POE26 بر درصد جوانه­زنی گیاهچه گندم رقم­های میهن و حیدری تحت تنش شوری (0، 50، 100، 150، 200، 500 و 1000میلی­مولار). مقادیر، میانگین 10 تکرار می­باشند. غلظت 0 بعنوان شاهد در نظر گرفته شده است.  برای هر رقم جداگانه، اختلاف درصد­ها با حروف غیرمشترک در هر ستون، بیانگر تفاوت معنادار آماری (P<0.05) بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن می باشد. (رقم میهن بدون باکتری:MG-B، رقم میهن با باکتری:MG+B، رقم حیدری بدون باکتری: HG-B، رقم حیدری با باکتری: HG+B)

 

در رقم میهن تاثیر غلظت بر همه فاکتورهای رشد بتنهایی معنی دار می باشد. در این رقم و در غیاب باکتری با افزایش غلظت نمک، طول بخش هوایی و سطح برگ کاهش یافت و این کاهش در حضور باکتری شدیدتر بود. در این رقم و در غیاب و حضور باکتری با افزایش غلظت نمک، طول ریشه افزایش یافت. وزن تر و خشک گیاهچه ها نیز تا غلظت 30 میلی­مولار افزایش و سپس کاهش یافت که این کاهش در حضور باکتری خفیف­تر بود. مقدار پرولین در حضور و عدم حضور باکتری افزایش یافت که این افزایش در حضور باکتری کمتر بود. مقدار اکسین در این رقم تحت اثر شوری تا غلظت 30 میلی­مولار افزایش و پس از آن کاهش یافت(جدول 1).

 

 

جدول 1- تاثیر تیمار­های شوری و باکتری Bacillus subtilis POE26 بر فاکتورهای رشد و محتوای پرولین و اکسین گیاهچه گندم رقم میهن تحت تنش شوری (0، 15، 30، 50، 100 و 150 میلی­مولار). مقادیر میانگین سه تکرار ± SE می­باشند. درصد تغییرات نسبت به غلظت 0 (بعنوان شاهد) در پرانتز درج شده است.  برای هر صفت جداگانه، اختلاف میانگین­ها با حروف غیرمشترک در هر ستون، بیانگر تفاوت معنادار آماری (P<0.05) بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن می باشد.

 

 

میهن

 

 

 

سطوح شوری

(mmol)

طول بخش هوایی

(mm)

طول ریشه

(mm)

سطح برگ

(mm2)

وزن تر

(g)

وزن خشک

(g)

پرولین

(mg/g FW)

اکسین

(ng/g FW)

بدون باکتری

0(شاهد)

372±2/5e

64±3/2a

112±1/2e

0/94±0/04d

0/21±0/03cd

1/12±0/06a

265±9cd

15

3±323 d (%13-)

105±5e

(64%+)

125±2/5f

 (11%)

1/54±0/04e

(15%+)

0/25±0/03e

(14%+)

1/3±0/03ab

(16%+)

274±9d

(3%+)

30

298±20c

(20%-)

113±3/6f

 (76%+)

140±1/5g

(25%-)

1/21±0/04f

(29%+)

0/3±0/02f

(36%+)

1/4±0/05bcd

(25%+)

281±11d

(6%+)

50

319±1/5d

(14%-)

123±2/6g

(92%+)

152±1/5h

(35%-)

0/59±0/07b

(36%-)

0/11±0/02a

(50%-)

1/5±0/08de

(34%+)

249±14c

(6%-)

100

380±1/5e

(2%+)

138±1/5h

(116%+)

115±2e

(3%-)

0/75±0/04c

(20%-)

0/16±0/02b

(27%-)

1/7±0/07fg

(52%+)

185±11a

(30%-)

150

301±1/5c

(19%-)

124±3/2g

(94%+)

99±1/7d

(11%-)

0/52±0/03a

(44%-)

0/1±0/02a

(55%-)

1/9±0/11g

(70%+)

185±15a

(30%-)

با باکتری

0

241±1/5a

(35%-)

91±2c

(42%+)

114±0/6e

(2%)

0/5±0/03f

(64%-)

0/24±0/01de

(9%+)

1/3±0/09ab

(16%+)

306±11e

(15%+)

15

230±1/5a

(38%-)

162±2/5i

(153%+)

114±1/7e

(2%+)

1/5±0/04g

(64%+)

0/3±0/02f

(36%+)

1/3±0/08abc

(16%+)

309±11e

(17%+)

30

231±2/5a

(38%-)

98±2/5d

(53%+)

93±4c

(17%-)

0/93±0/02d

(1%-)

0/18±0/02b

(18%-)

1/3±0/07abc

(16%+)

321±12e

(21%+)

50

262±4/9b

(30%-)

115±2f

(81%+)

77±2/6b

(31%-)

0/87±0/06d

 (7%-)

0/19±0/02bc

(5%-)

1/3±0/1abc

(16%+)

283±6d

(7%+)

100

321±3d

(14%-)

184±5/3j

(187%+)

71±2/6a

(36%-)

1/02±0/05e

(9%-)

0/22±0/03de

(14%-)

1/5±0/09cd

(34%+)

219±10b

(17%-)

150

330±3/5d

(11%-)

81±1/5b

(27%+)

69±1a

(38%-)

0/51±0/03a

(45%-)

0/1±0/02a

(55%-)

1/6±0/11ef

(43%+)

207±13b

(22%-)

 

 

جدول 2- همبستگی پیرسون میان صفات مورد بررسی درگیاهچه گندم رقم میهن تحت تنش شوری و باکتری Bacillus subtilis POE26. ns، *و **: بترتیب بیانگر عدم اختلاف معنی­دار و اختلاف معنی­دار در سطوح احتمال پنج و یک درصد می­باشند.

صفات مورد بررسی

طول هوایی

طول ریشه

سطح برگ

وزن تر

وزن خشک

پرولین

طول هوایی

 

 

 

 

 

 

طول ریشه

ns1/0-

 

 

 

 

 

سطح برگ

ns 11/0

ns09/0-

 

 

 

 

وزن تر

ns 24/0-

*40/0

ns 16/0

 

 

 

وزن خشک

ns 32/0-

ns19/0

ns 27/0

**78/0

 

 

پرولین

ns 32/0

ns26/0

ns12/0-

**44/0-

**63/0-

 

اکسین

**71/0-

ns21/0-

ns22/0

**47/0

**61/0

**75/0-

 

                 

 

 

در رقم حیدری نیز تاثیر غلظت بر همه فاکتورهای رشد بتنهایی معنی­دار می باشد. در این رقم بر خلاف رقم میهن و در غیاب باکتری با افزایش غلظت نمک، طول بخش هوایی افزایش یافت و حضور باکتری از شدت این افزایش کاست. در این رقم همانند رقم میهن و در غیاب و حضور باکتری با افزایش غلظت نمک، طول ریشه افزایش یافت و این افزایش در غیاب باکتری شدیدتر بود. با افزایش شوری تا سقف 30 میلی­مولار سطح برگ افزایش داشت و پس از آن متحمل کاهش شد. وزن تر و خشک گیاهچه­ها نیز تا غلظت 100 میلی­مولار افزایش و سپس کاهش یافت که این کاهش در حضور باکتری خفیف­تر بود. همانند رقم میهن مقدار پرولین در حضور و عدم حضور باکتری افزایش یافت که این افزایش در حضور باکتری کمتر بود. مقدار اکسین در این رقم تحت اثر شوری تا غلظت 30 میلی­مولار افزایش و پس از آن کاهش یافت(جدول 3).

 

 

جدول 3- تاثیر تیمار­های شوری و باکتری Bacillus subtilis POE26 بر فاکتورهای رشد و محتوای پرولین و اکسین گیاهچه گندم رقم حیدری تحت تنش شوری (0، 15، 30، 50، 100 و 150 میلی­مولار). مقادیر میانگین سه تکرار ± SE می­باشند. درصد تغییرات نسبت به غلظت 0 (بعنوان شاهد) در پرانتز درج شده است.  برای هر صفت جداگانه، اختلاف میانگین­ها با حروف غیرمشترک در هر ستون، بیانگر تفاوت معنادار آماری (P<0.05) بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن می باشد.

 

 

حیدری

 

 

 

سطوح شوری

(mmol)

طول بخش هوایی

(mm)

طول ریشه

(mm)

سطح برگ

(mm2)

وزن تر

(g)

وزن خشک

(g)

پرولین

(mg/g FW)

اکسین

(ng/g FW)

بدون باکتری

0(شاهد)

3±353b

62±3a

131±20fg

0/73±0/03d

0/14±0/01ab

1/21±0/03a

292±8ab

15

i5/1±440 (%24)

103±6d

(66%+)

141±2g

 (8%)

1/21±0/04f

(66%+)

0/25±0/01cd

(78%+)

1/26±0/03ab

(4%+)

314±5bc

(7%+)

30

431±6/2h

(22%)

114±4f

 (84%+)

120±2def

(8%-)

1/51±0/03g

(107%+)

0/31±0/01d

(121%+)

1/39±0/04bc

(15%+)

314±9bc

(8%+)

50

431±1/5h

(22%)

132±3h

(113%+)

166±2h

(27%)

1/20±0/04f

(64%)

0/25±0/01acd

(79%)

1/44±0/10c

(19%+)

282±11ab

(4%-)

100

405±13f

(14%+)

144±4i

(132%+)

123±3ef

(6%-)

0/69±0/06cd

(4%-)

0/14±0/02ab

(0%)

1/7±0/07d

(40%+)

270±10a

(8%-)

150

371±1/5d

(5%)

132±3h

(113%+)

49±3a

(63%-)

0/53±0/03b

(29%-)

0/11±0/01ab

(21%-)

1/83±0/08e

(51%+)

270±14a

(9%-)

با باکتری

0

311±2/3a

(12%-)

73±2b

(18%+)

96±12c

(27%-)

0/5±0/03b

(32%-)

0/09±0/01ab

(36%-)

1/24±0/06a

(5%+)

322±11bc

(11%+)

15

352±2/3b

(2/0%-)

124±5g

(100%+)

210±3j

(60%+)

1/61±0/04h

(121%+)

0/24±0/16cd

(71%+)

1/3±0/09abc

(7%+)

336±9c

(15%+)

30

369±4d

(5/4%)

107±3de

(73%+)

108±8cd

(18%-)

0/66±0/02c

(10%-)

0/14±0/01ab

(0%)

1/32±0/08abc

(9%+)

318±64bc

(21%+)

50

423±1/3g

(20%)

106±2de

(71%+)

190±4i

(45%)

0/82±0/02e

 (12%-)

0/16±0/02bc

(14%)

1/28±0/07ab

(6%+)

301±4abc

(2%+)

100

361±5/1c

(3/2%)

111±2ef

(79%+)

111±4e

(15%-)

0/32±0/02a

(56%-)

0/07±0/01a

(36%+)

1/44±0/10c

(19%+)

287±10ab

(2%-)

150

383±3/6e

(5/8%)

83±3c

(34%+)

76±4b

(42%-)

0/28±0/01a

(62%-)

0/50±0/01a

(29%-)

1/63±0/11d

(34%+)

286±15ab

(3%-)

جدول4- همبستگی پیرسون میان صفات مورد بررسی درگیاهچه گندم رقم حیدری تحت تنش شوری و باکتری Bacillus subtilis POE26. ns، *و **: بترتیب بیانگر عدم اختلاف معنی­دار و اختلاف معنی­دار در سطوح احتمال پنج و یک درصد می­باشند.

صفات مورد بررسی

طول هوایی

طول ریشه

سطح برگ

وزن تر

وزن خشک

پرولین

طول هوایی

 

 

 

 

 

 

طول ریشه

**45/0

 

 

 

 

 

سطح برگ

ns 29/0

ns 17/0

 

 

 

 

وزن تر

**45/0

ns 33/0

**67/0

 

 

 

وزن خشک

**54/0

ns 29/0

**52/0

**86/0

 

 

پرولین

ns 10/0

**51/0

**53/0-

*34/0-

ns 23/0-

 

اکسین

ns 15/0-

ns 25/0-

*37/0

*41/0

ns 30/0

**47/0-

 

                 

 

جدول 5- نسبت ریشه به بخش هوایی تحت تاثیر تیمار­های شوری (0، 15، 30، 50، 100 و 150 میلی­مولار) و باکتری Bacillus subtilis POE26 درگیاهچه گندم رقم­های میهن و حیدری. برای هر رقم جداگانه، اختلاف میانگین­ها با حروف غیرمشترک در هر دو ستون، بیانگر تفاوت معنادار آماری (P<0.05) بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن می باشد.

 

رقم میهن

رقم حیدری

سطوح شوری(mmol)

بدون باکتری

با باکتری

بدون باکتری

با باکتری

0

a17/0

e38/0

a20/0

c23/0

15

c33/0

i70/0

e29/0

g35/0

30

e38/0

f42/0

f31/0

e29/0

50

e39/0

g44/0

f31/0

d25/0

100

d36/0

h57/0

h40/0

f31/0

150

f41/0

b25/0

g34/0

b21/0

 

نتایج مشخص کرد که در گیاهچه­های گندم تحت تنش شوری با افزایش سطح شوری (در نبود باکتری) محتوای اکسین تا غلظت 50 میلی مولار نسبتا ثابت بوده و پس از آن بشکل معنی­داری کاهش می یابد. محتوی اکسین در رقم حیدری نسبت به میهن به طرز معنی داری بیشتر بود. تیمار با باکتری بطرز معنی داری محتوی اکسین را بالا برد. نتایج نشان حاصل از سنجش تولید هورمون اکسین توسط باکتری در شکل 2 نشان داده شده است. نتایج مشخص کرد که در باکتری با افزایش سطح تریپتوفان، محتوای اکسین بشکل معنی­داری افزایش می یابد.

 

 

شکل 2- تاثیر غلظت­های تریپتوفان بر محتوای اکسین محیط کشت باکتری Bacillus subtilis POE26 مقادیر میانگین سه تکرا ر می­باشند. اختلاف میانگین­ها با حروف غیرمشترک در هر ستون، بیانگر تفاوت معنادار آماری0.05) (P< بر اساس نتایج آزمون چنددامنه­ای دانکن می باشد.

 

بحث و نتیجه گیری

شوری یکی از استرس های شدید است که از دو جنبه بر گیاه تاثیر منفی می گذارد: درگام نخست ریشه با آن مواجه شده و در کوتاه مدت باعث استرس اسمتیک و کاهش دسترسی به آب می گردد. در گام بعدی و در درازمدت باعث سمیت یونی و برهم خوردن توازن ریزمغزی­ها در سیتوسول می شود(9). شوری مانع اصلی برای تولید مثل گیاهان در مرحله‌ی جوانه‌زنی محسوب می‌شود(4) در شوری‌های پایین عامل محدودکننده رشد، کمبود عناصر ضروری لازم برای رشد دانه‌رست می‌باشد، در حالی که در شوری‌های بالا عامل محدودکننده، تنش شوری بوده که با ایجات اثرات اسمزی و سمیت یونی رشد دانه‌رست را مختل می‌سازد(2). در هر دو رقم در غلظت 200 میلی­مولار، تیمار با باکتری باعث افزایش معنی­دار جوانه­زنی  بذرها شد. تاثیر مثبت باکتری­های تولیدکننده فیتوهورمون­هایی مانند ایندول استیک اسید، جیبرلین­ها و سیتوکینین­ها بر جوانه­زنی، در مطالعات پیشین مورد تایید قرار گرفته بودند(17). جوانه­زنی در غلظت بالاتر متوقف شده بود که نشان داد این دو رقم گندم در خاکهای شور با غلظت بیش از 200 میلی­مولار قادر به جوانه زنی نیستند.

تغییر طول بخش هوایی با تغییر سطح شوری در هر دو رقم گندم با یکدیگر اختلاف معنی دار دارد. عموما تیمار شوری باعث کاهش بخش هوایی در گیاه می شود که می تواند بشکل کاهش رشد و ریزش برگ­ها بواسطه افزایش تولید اتیلن باشد. این یک مکانیسم دفاعی با هدف جلوگیری از تعرق و از دست دادن آب می باشد(9). شوری در رقم میهن بر روی طول بخش هوایی تاثیر منفی دارد اما در رقم حیدری با افزایش غلظت نمک، رشد بخش هوایی افزایش یافته است. در تیمار باکتری با افزایش غلظت نمک، رشد بخش هوایی کاهش یافته است.

ریشه اندامی اسـت کـه وظیفه جـذب آب و امـلاح معـدنی را بـعهده دارد و تنش شوری بیشتر از ناحیه ریشه بـه گیـاه وارد می شود زیرا که نخستین بخشی از گیاه که با شوری مواجه می گردد، ریشه ها هستند(3). اثر غلظت بتنهایی بر طول ریشه در هر دو رقم معنی دار بود یعنی طول ریشه با افزایش سطح شوری در هر دو رقم گندم نسبت به شاهد افزایش یافت ولی از این لحاظ بین دو رقم تفاوتی وجود ندارد. این امر می تواند بدلیل تمایل ریشه گیاه به فرار از ناحیه شور در بستر و ورود به نواحی با شوری کمتر باشد.  در رقم میهن تیمار با باکتری باعث افزایش طول ریشه شده است. در رقم حیدری نیز تیمار با باکتری باعث افزایش طول ریشه نسبت به شاهد شد اما این افزایش نسبت به عدم حضور باکتری، کمتر بود. آنالیز ضریب همبستگی بین طول ریشه و محتوای اکسین نشان داد که در یک همبستگی ضعیف معکوس بین این دو عامل وجود دارد یعنی با افزایش غلظت اکسین، طول ریشه کاهش می­یابد. در هر دو رقم حضور باکتری باعث کاهش شدیدتر طول ریشه نسبت به شاهد و حالت عدم حضور باکتری می­گردد که با توجه به این که باکتری مورد بررسی، تولیدکننده اکسین است، این کاهش را می توان به افزایش سطح اکسین باکتریایی در ریشه نسبت داد.

یک شاخص مهم برای ارزیابی تاثیر تنش بر گیاه، تغییر نسبت ریشه به بخش هوایی می­باشد. با افزایش شوری در هر دو رقم و در غیاب باکتری، نسبت ریشه به بخش هوایی افزایش یافت(جدول 5) که با مطالعات Acosta-Motos و همکاران(2017) مطابقت داشت که این کاهش را هم در گیاهان حساس و هم مقاوم گزارش کرده بودند(9). این افزایش نسبت ریشه به بخش هوایی یک مکانیسم مقاومت و بقاء است و گیاه با افزایش این نسبت، یون­های سمی را در ناحیه ریشه مهار می­کند تا از انتقال آنها به بخش هوایی جلوگیری کند(9).

با افزایش سطح تنش شوری، محتوای پرولین آزاد نمونه­ها افزایش معنی­دار یافت. کاربرد باکتری، بتنهایی موجب افزایش  معنی­دار پرولین در تیمار باکتری در هر دو رقم گیاهچه­های گندم نسبت به گروه شاهد شد. بین دو رقم اختلاف معناداری از نظر مقدار پرولین دیده نشد. در حضور هر دو عامل شوری و باکتری و در هردو رقم، تیمار با باکتری باعث کاهش محتوای پرولین نسبت به غلظت­های مشابه در غیاب باکتری گردید. آنالیز ضریب همبستگی بین محتوای پرولین آزاد و فاکتورهای رشد دیگر نشان داد که در رقم میهن بین طول ریشه و بخش هوایی با محتوای پرولین همبستگی قوی (>7/0) وجود ندارد اما در رقم حیدری بین پرولین و طول ریشه همبستگی وجود دارد. با توجه به تاثیر مثبت تیمار  باکتری درافزایش طول ریشه و همبستگی بین مقدار پرولین و طول ریشه در رقم حیدری و عدم وجود همبستگی در رقم میهن برغم افزایش طول ریشه، می توان نتیجه گرفت که ایفای نقش باکتری در تغییر طول ریشه بدون دخالت پرولین باشد. البته Poustini و همکاران (2007 )نیز با مطالعه گندم گزارش نمودند که همبستگی معنی­داری میان تجمع پرولین برگ و تحمل به تنش شوری در ارقام گندم دیده نشد(26). در هر دو رقم بین محتوای پرولین و وزن تر و خشک گیاه یک همبستگی معکوس وجود دارد. گیاهان بـرای ساختن مواد آلی (مانند پرولین) انرژی زیادی صرف می­کننـد کـه بـا صـرف انرژی زیاد جهت تنظیم اسـمزی بـرای مقابلـه بـا شـوری باعـث کـاهش کـارائی ریشـه در تـامین عناصر غذایی و آب برای سایر اندام ها می­شـود و رشد اندام­های هوایی کاهش یافته و در نتیجـه تنش شوری باعـث کـاهش انـدام­زائـی و تولیـد ماده خشک شده و در نهایت کاهش انتقال مواد غذایی از لپه­ها به محور جنینی را بدنبال داشـته و در نتیجـه کـاهش وزن ریشــه و وزن سـاقه را منجر شود(6).

در هر دو رقم میهن و حیدری با افزایش شوری بترتیب تا 30 و 50 میلی مولار وزن تر افزایش می­یابد که این افزایش در  حیدری بیشتر از میهن است. در غلظت های بالاتر کاهش وزن تر را می­بینیم. تفاوت بین نمونه های تیمار دیده با باکتری و تیمار ندیده معنی­دار است و تاثیر  تیمار با باکتری بر روی وزن تر در هر دو رقم معنی­دار است و رقم میهن نسبت به حیدری حساس­تر است. در مجموع تیمار با باکتری در هر سطح از تنش شوری باعث حفظ وزن تر گیاهچه­ها نسبت به گروه کنترل شدند.

Munus و James (2003) با مطالعه واکنش ارقام گندم دوروم به تنش شوری، بررسی وزن خشک بوته را یکی از صفات اصلی قابل بررسی و قابل اطمینان جهت بررسی واکنش گیاهان به تنش شوری بیان نمودند (22). Zhao و همکاران (2007) نیز با بررسی ارقام یولاف گزارش دادند که تنش شوری سبب کاهش معنی­دار وزن بوته در گیاهچه یولاف گردید (32). در هر دو رقم با افزایش شوری تا 30 میلی مولار وزن خشک افزایش می­یابد که این افزایش در  حیدری بیشتر از میهن است. در غلظت­های بالاتر کاهش وزن خشک را می­بینیم. این کاهش وزن خشک با نتایج فرهودی (1392) نیز مطابقت داشت(4). تفاوت بین نمونه­های تیمار دیده با باکتری و تیمار ندیده معنی­دار است. در هر دو رقم تیمار باکتری باعث افزایش وزن خشک شد. مستاجران و قاسمی(1397) نیز با تلقیح گیاه گندم نشان دادند که وزن خشک ریشه و بخش هوایی در اثر تلقیح با برخی سویه­های آزوسپیریلوم افزایش معنی­داری نشان داد(7). همانند وزن تر، تغییر وزن خشک با تغییر سطح شوری در هر دو رقم گندم با یکدیگر اختلاف معنی­دار دارد و رقم میهن نسبت به حیدری حساس­تر است.در مجموع تیمار با باکتری در هر سطح از تنش شوری باعث افزایش وزن خشک گیاهچه­ها نسبت به گروه کنترل شدند. این امر می تواند به تولید و انباشتگی ترکیباتی مانند اسمولیت­ها در گیاه جهت مقاومت در برابر تنش شوری باشد(9).

ممکن است کاهش وزن خشــک و تر در غلظت­های بالای نمک در اثــر اختلال در جذب مواد غـذایی لازم جهـت رشـد باشد. این کاهش می­تواند در نتیجه اثرات منفی تنش شوری روی تولید ریشه­ها و ساقه­هـای کـم وزن تـر توسـط گیاهچه باشد. سمیت یونی، عدم تعـادل عناصر غذایی و بهم خوردن تنظـیم اسـمزی ازاثرات تنش شوری است. محــیط شــور دارای مقـدار زیـادی از یـون­هـای مضـر ماننـد منیزیم، کلر، سدیم و سولفات مـی­باشـد کـه یـا خـود آنهـا مضـر هسـتند یـا باعـث اخـتلال در متابولیسم­های عناصر غـذایی دیگـر مـی­شـوند. مثلاٌ رقابت سدیم با پتاسیم و کلر با نیترات باعث اختلال در جـذب عناصـر غـذایی مـی­شـود. در نتیجه گیاه با صرف انرژی بیشتر برای تولید مـواد آلی خود، انرژی لازم برای مقابله با تنش شوری را از دست داده و کارایی ریشه با کاهش مواجـه شده و نهایتاٌ رشد اندام هوایی کـاهش یافتـه و از طول و وزن آنهـا کاسـته شـ ده و در نهایـت وزن خشک برگ و اندام هوائی با کاهش مواجه مـی­شود(3).

در رقم میهن بین طول ریشه و طول بخش هوایی و سطح برگ همبستگی مشاهده نشد اما در رقم حیدری بین طول ریشه با طول بخش هوایی یک همبستگی متوسط و با سطح برگ یک همبستگی ضعیف دیده شد که این امر می توانـد نشـان دهنده ارتباط بین ریشه (بـعنـوان انـدامی که آب و عناصر غذایی لازم را بسایر انـدام هـا منتقل می­کند) با اندام هوایی و برگ باشد. یعنـی تا زمانی که تنش شوری وجود ندارد ایـن انتقـال با موفقیت صورت گرفته و هر گونـه افـزایش درطول یـا وزن ریشـه باعـث افـزایش طـول و وزن برگ و اندام هوایی و بیومس کل خواهد شـد وبر عکس هر چـه گیـاه در معـرض شـوری قـرار بگیرد با کاهش بیومس ریشه از وزن سایر قسمت ها نیز بدلیل عدم انتقال یا انتقال کم آب و عناصـر غذایی از ناحیـه ریشـه کاسـته خواهـد شـد. ایـن نتـایج بـا  نتـایج اقبـال و نسیم (24) کـه ضـرایب همبسـتگی بـین صــفات در مرحلــه گیاهچــه­ای را معنــی­دار ارزیابی کرده بودند، مطابقت داشت. از طرفـــی انتقـــال کربوهیدرات­های غیر­ساختمانی از ریشه به اندام هوایی در شرایط شوری نسبت به شرایط طبیعـی کمتر است، در نتیجه بیوماس کل تولید شـده در اثر تنش شـوری کـاهش مـی یابـد . دلیـل دیگـر کاهش وزن بیوماس کل می­تواند ناشی از هزینـه انرژی متابولیک مربوط به سـازگاری در شـرایط تنش، کاهش نرخ فتوسنتز در واحد سطح برگ ،کاهش جذب کربن، صدمه به بافت­ها و رسـیدن به حداکثر غلظـت نمکـی باشـد کـه گیـاه آن  را تحمل می­کند. کاهش وزن خشـک بیومـاس در اثر افزایش سطوح شـوری نشـان دهنـده حسـاس بودن گندم به تنش شوری در مراحل اولیه رشـد و بخصـوص در مرحلـه 4-3 برگـی مـی­باشـد(3)

برگ مکان اصلی فتوسنتز در گیاه است و هرگونه آسیب فیزیکی و عملکردی به آن موجب کاهش عملکرد گیاه می­گردد. کاهش سطح برگ یکـی از اولـین واکـنش هـای گیاهان در برابر تـنش شـوری مـی­باشـد . بـه ایـن دلیل که تجمع ماده خشک و سطح برگ توسط شوری بطور پیوسـته کـاهش مـی­یابـد، ممکـن است کاهش سطح برگ یکی از دلایـل کـاهش رشد در اثر شوری باشد. تـنش شـوری از طریـق کاهش تکثیر سلولی و کاهش تجمع مـاده خشـک باعـث کوتـاه شـدن میـانگره­هـا شـده و ارتفاع بوته و در نتیجه وزن خشک برگ و اندام هوایی را کاهش مـی­دهـد . البتـه بعضـی از منـابع علت اصلی کاهش وزن برگ را کـاهش تعـداد پنجه در گلدان و در نتیجه کـاهش سـطح بـرگ دانسـته­انـد. آنهـا بیـان داشـتند کـه مقـداری از تفاوت در تعداد پنجـه بـه تفـاوت­هـای ژنتیکـی ارقـام بـر مـی­گـردد (6). سـطح اندام­های فتوسنتز کننده در اثـر تـنش شـوری بـراثـر مـرگ تعـدادی از بـرگ هـا بسـیار کـاهش می­یابد و راندمان فتوسنتز برگ هـای بـاقی مانـده نیـــز زیـــاد نمـــی­باشـــد. در این تحقیق هم مشاهده شد که در اثر تیمار شوری و در غیاب باکتری سطح برگ کاهش یافت اما تیمار با باکتری باعث افزایش سطح برگ نسبت به عدم حضور باکتری گردید. مقصودی و همکاران(1393) نشان دادند که در اثر کاربرد اکسین، شاخص سطح برگ افزایش یافته و در دوام سطح برگ گندم دوروم نیز اثر مثبتی نشان داد(8). تولید اکسین توسط این باکتری مورد تایید قرار گرفت که با نتایج Lastochkina و همکاران(2017) مطابقت دارد(18). از این رو می­توان نتیجه­گیری کرد که افزایش سطح برگ در هر دو رقم مورد مطالعه می­تواند بدلیل تولید اکسین توسط باکتری باسیلوس سوبتیلیس باشد. درنهایت بر مبنای صفات مورد بررسی، رقم حیدری در برابر تنش شوری مقاومتر از رقم میهن بود. با توجه به نقش این باکتری در تحمل شوری گیاه، پیشنهاد می­شود که در مورد جایگاه استقرار این باکتری در گیاه و سایر تاثیرات آن بر فیزیولوژی و عملکرد اقتصادی رقم های تجاری بومی گندم مطالعات تکمیلی انجام گردد.

سپاسگزاری

این پروژه تحقیقاتی در دانشکده­های علوم پایه دانشگاههای بوعلی­سینا و لرستان انجام شده که بدین­وسیله از کلیه کسانی که در انجام این پروژه همکاری کردند، تشکر و قدردانی می­شود.

  • 1- احمدی، ک.، عبادزاده,ح.ر.، حاتمی، ف.، عبدشاه، ه.، کاظمیان، آ.، 1399 آمارنامه کشاورزی سال زراعی 98- 1397. وزارت جهادکشاورزی، معاونت برنامه ریزی و اقتصادی، مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات.

    2- بناکار، م.ح.، امیری، ح.، رنجبر، غ.ح.، سرافراز اردکانی، م.ر.، 1400، تعیین آستانه تحمل به شوری توده‌های مختلف شنبلیله (Trigonella Foenum-graecum L.) در مرحله جوانه‌زنی با استفاده از مدل‌های تجربی، مجله پژوهش­های گیاهی، 34(4): 911-897.

    3- زادوریان, گ.، خدارحمی، م.، امینی، ا.، مصطفوی، خ.، ،1390 بررسی تاثیر تنش شوری ناشی از کلرید سدیم بر بیوماس ارقام تجارتی گندم نان در مرحله گیاهچه ای. مجله زراعت و اصلاح نباتات 7(1): 83-69.

    4- عباس­پور، ن.، مسیبی، م.، محمدخانی، ن.، رحمانی، ف.، 1401، تاثیر شوری بر جوانه­زنی بذر و خصوصیات بیوشیمیایی گیاهچه­های Salsola crassa، مجله پژوهش­های گیاهی، 35(1): 111-99.

    5- فرهودی, ر. (1392). بررسی اثر تنش شوری بر رشد و ویژگیهای فیزیولوژیک نه رقم گندم در مرحله رشد رویشی. فصلنامه علمی پژوهشی فیزیولوژی گیاهان زراعی 5(20): 86-71.

    6- کافی, د. ا.، استوارت ، م. 1380. اثرات شوری در رشد و عملکرد نه رقم گندم. مجله علوم و صنایع کشاورزی 12(1).

    7- مستاجران, ا. ، قاسمی ،ح. ر. 1397. بررسی اثر همیاری باکتری آزوسپیریلوم برازیلنس (Azospirillum brasilense Sp7 and Sp245) بر شاخص‌های رشد و برخی شاخص‌های بیوشیمیایی دانه رست‌های گندم (Triticum aestivum) در شرایط شوری. مجله پژوهشهای گیاهی (مجله زیست شناسی ایران) 31(3).

    8- مقصودی, ب.، جعفری حقیقی، ب.، جعفری، ع.، تاثیر کاربرد عناصر ریز مغذی و هورمون اکسین بر عملکرد و اجزاء عملکرد گندم دوروم." اکوفیزیولوژی گیاهی 6(16): 26-13.

     

    • Acosta-Motos JR, Ortuño MF, et al. 2017 . Plant Responses to Salt Stress: Adaptive Mechanisms. Agronomy 7(18)
    • Bates, L. S., S. Waldren, et al. 1993. Rapid determination of free proline for water–stress studies. Plant Soil 39:205-207
    • Berg, G. 2009 Plant-microbe interactions promoting plant growth and health: perspectives for controlled use of micro-organisms in agriculture. Appl Microbiol Biotechnol 84:11-18
    • Bric JM, Bostock RM, et al. 1999. Rapid in situ assay for indoleacetic acid production by bacteria immobilized on a nitrocellulose Membrane. Applied and Environmental Microbiology 57:535-538.
    • Choudhary, D. K., A. K. Sharma, et al. 2017 Volatiles and food security, Springer.
    • Dodd, I., C, and F. Perez-Alfocea. 2012. Microbial amelioration of crop salinity stress J Exp Bot 63:3415-3428.
    • Forni, C., D. Duca, et al. 2017. Mechanisms of plant response to salt and drought stress and their alteration by rhizobacteria. Plant Soil 410:335-356.
    • Hashem, A., E. F. Abd-Allah, et al. 2019. Comparing symbiotic performance and physiological responses of two soybean cultivars to arbuscular mycorrhizal fungi under salt stress. Saudi J Biol Sci 26(1):38-48.
    • Karthik, M., P. Periyasamy, et al. 2017. Endophytic bacteria associated with banana cultivars and their inoculation effect on plant growth. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. 92:1-9
    • Lastochkina, O., L. Pusenkova, et al. 2017. Effects of Bacillus subtilis on some physiological and biochemical parameters of Triticum aestivum L. (wheat) under salinity. Plant Physiology and Biochemistry. 121:80-88
    • Liu, H., L. C. Carvalhais, et al. 2017. Inner Plant Values: Diversity, Colonization and Benefits from Endophytic Bacteria. Frontiers in Microbiology. 8:25-52
    • Munns R, Husain S, et al.2002. Avenues for increasing salt tolerance of crops, and the role of physiologically based selection traits. Plant Soil. 247:93-105
    • Munns R, James RA, et al. 2006. Approaches to increasing the salt tolerance of wheat and other cereals. Journal of Experimental Botany. 57:1025-1043
    • Munns, R. and R. A. James. 2003. Screening methods for salinity tolerance: a case study with tetraploid wheat. Plant and Soil. 253:201-218.
    • Munns, R. and M. Tester. 2008. Mechanisms of salinity tolerance. Rev. Plant Biol. Annu 59:651-681.
    • Naseem, A., M. S. Iqbal, et al.2001. Comprative Performance of Wheat (Triticum aestivum L.) Genotypes under salinity stress II: Ionic composition. Journal of Biological Science. 1:43-45 .
    • Patten, C. L. and B. R. Glick . 2002. Role of pseudomonas putida indoleacetic acid in development of host plant root system. Applied Environmental Microbiology 68:3795-3801.
    • Poustini, K., A. Siosemardeh, et al.2007. Proline accumulation as response to salt stress in 30 wheat (aestivum) cultivars. Genetic Resource Crop Evolution. 54:925-934.
    • Rajaee S, Reisee F, et al. 2007. Evaluation of the potential of some Azotobacter chroococcum isolates from native soils of Chahar Mahal and Bakhtiari in production of plant growth promoting substances. Scientific Journal of Agriculture of Shahid Chamran University. 30:33-47
    • Robinson, R. J., B. A. Fraaije, I. M. Clark, R. W. Jackson, P. R. Hirsch & T. H. Mauchline (2016) Endophytic bacterial community composition in wheat (Triticum aestivum) is determined by plant tissue type, developmental stage and soil nutrient availability. Plant Soil, 405, pages381–396.
    • Soltani, J. Endophytism in Cupressoideae (Coniferae): A Model in Endophyte Biology and Biotechnology. In: “Endophytes: Biology and Biotechnology”. Pp. 127-143. Edited by Maheshwari D. Sustainable Development and Biodiversity, vol 15. Springer
    • Soltani, J., M. Zaheri-Shoja, et al. 2016. Diversity and bioactivity of bacterial endophyte community of Cupressaceae. Forest Pathology 46(4):353-361.
    • Xia Y, De Bolt S, Dreyer J, Scott D and Williams MA 2015 Characterization of culturable bacterial endophytes and their capacity to promote plant growth from plants grown using organic or conventional practices. Front. Plant Sci. 6:490 doi: 10. 3389/fpls.2015.00490
    • Zhao, G. Q., B. L. Ma, et al.2007. Growth, Gas exchange, chlorophyll fluorescence and ion content of Nakota Oat in response to salinity. Crop Science. 47:123-131
Volume 37, Issue 2
Spring 2024
Pages 152-167

  • Receive Date 16 February 2022
  • Revise Date 06 April 2022
  • Accept Date 15 April 2022