تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر عملکرد، رنگدانه‌های فتوسنتزی و برخی صفات فیزیولوژیک تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران.
چکیده
به‌منظور بررسی تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر عملکرد، محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی و برخی صفات فیزیولوژیک تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح پایه بلوک کامل تصادفی در سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه محقق اردبیلی در سال 99-1398 اجرا شد. فاکتورهای آزمایشی آبیاری در سه سطح (آبیاری کامل به‌عنوان شاهد و قطع آبیاری در 50 درصد مراحل آبستنی و سنبله‌دهی)، کاربرد کودهای زیستی در چهار سطح (عدم کاربرد به‌عنوان شاهد، کاربرد ورمی‌کمپوست، میکوریزا، کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا) و محلول‌پاشی پوترسین (محلول‌پاشی با آب به‌عنوان شاهد و محلول‌پاشی 0/4 و 0/8 میلی‌مولار) را شامل می‌شدند. نتایج نشان داد کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 0/8 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی محتوای قندهای محلول و پرولین (به‌ترتیب 47/54 و 51/03 درصد) نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین در شرایط آبیاری کامل افزایش داد. کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 0/8 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل هدایت الکتریکی (54/01 درصد) و محتوای مالون‌دی‌آلدهید (52/17 درصد) کاهش داد ولی محتوای کلروفیل کل، کاروتنوئید، عملکرد کوانتومی، شاخص نیتروژن، هدایت روزنه‌ای و محتوای نسبی آب (به‌ترتیب 60/95، 46/03، 42/09، 36/07، 47/85 و 57/7 درصد)، محتوای پروتئین و عملکرد دانه (به‌ترتیب 59/04 و 39/6 درصد) را نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی افزایش داد. به‌نظر می‌رسد کاربرد توام کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا) و محلول‌پاشی 0/8 میلی‌مولار پوترسین، می‌تواند عملکرد دانه تریتیکاله را تحت شرایط محدودیت آبی به‌واسطه بهبود شاخص‌های فیزیولوژیک افزایش دهد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Effect of biofertilizers and putrescine on yield, photosynthetic pigments and some physiological traits of triticale under water limitation conditions

نویسندگان English

Hamed Narimani
Raouf Seyed Sharifi
Mohammad Sedghi
Department of Plant Production and Genetics, Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Mohaghegh Ardabili. Iran.
چکیده English

In order to study the effect of biofertilizers and putrescine on yield, photosynthetic pigments and some physiological traits of triticale under water limitation conditions, an experiment as factorial was conducted based on randomized complete block design with three replications at the research farm of University of Mohaghegh Ardabil during 2020. The experimental factors were included irrigation in three levels (full irrigation as control; irrigation withholding at 50% of heading stage and booting stage), application of biofertilizers (no application of biofertilizers as control, application of vermicompost, Mycorrhiza, both application vermicompost and Mycorrhiza), foliar application of putrescine (foliar application with water as control, foliar application of 0.4 and 0.8 mM). The results showed that both application of vermicompost with mycorrhiza and foliar application of 0.8 mM putrescine under irrigation withholding in booting stage increased soluble sugars and proline content (47.54 and 51.03%, respectively) in comparison with no application of biofertilizers and putrescine under full irrigation. Both application biofertilizers and foliar application of 0.8 mM putrescine under full irrigation decreased EC (54.01%) and malondialdehyde (52.17%) but increased total chlorophyll content, carotenoid, quantum yield, nitrogen index, stomatal conductivity and RWC (60.95, 46.03, 42.09, 36.07, 47.85, 57.7% respectively) protein content and grain yield (59.04 and 39.6% respectively) in comparison with no application of biofertilizers and putrescine under irrigation withholding in booting stage. It seems that both application of biofertilizers (vermicompost with mycorrhiza) and foliar application of 0.8 mM putrescine can increase the grain yield of triticale under water limitation conditions by improving the physiological indices.

کلیدواژه‌ها English

Anthocyanin
chlorophyll content
mycorrhiza
quantum yield
vermicompost

تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر عملکرد، رنگدانه­های فتوسنتزی و برخی صفات فیزیولوژیک تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

حامد نریمانی*، رئوف سیدشریفی و محمد صدقی

ایران اردبیل، دانشگاه محقق اردبیلی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی

تاریخ دریافت: 08/03/1401          تاریخ پذیرش: 29/07/1401

چکیده

به­منظور بررسی تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر عملکرد، محتوای رنگدانه­های فتوسنتزی و برخی صفات فیزیولوژیک تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح پایه بلوک کامل تصادفی در سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه محقق اردبیلی در سال 99-1398 اجرا شد. فاکتورهای آزمایشی آبیاری در سه سطح (آبیاری کامل به‌عنوان شاهد و قطع آبیاری در 50 درصد مراحل آبستنی و سنبله­دهی)، کاربرد کودهای زیستی در چهار سطح (عدم کاربرد به‌عنوان شاهد، کاربرد ورمی‌کمپوست، میکوریزا، کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا) و محلول­پاشی پوترسین (محلول­پاشی با آب به­عنوان شاهد و محلول­پاشی 4/0 و 8/0 میلی­مولار) را شامل می‌شدند. نتایج نشان داد کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی محتوای قندهای محلول و پرولین (به‌ترتیب 54/47 و 03/51 درصد) نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین در شرایط آبیاری کامل افزایش داد. کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل هدایت الکتریکی (01/54 درصد) و محتوای مالون‌دی‌آلدهید (17/52 درصد) کاهش داد ولی محتوای کلروفیل کل، کاروتنوئید، عملکرد کوانتومی، شاخص نیتروژن، هدایت روزنه‌ای و محتوای نسبی آب (به‌ترتیب 95/60، 03/46، 09/42، 07/36، 85/47 و 7/57 درصد)، محتوای پروتئین و عملکرد دانه (به‌ترتیب 04/59 و 6/39 درصد) را نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی افزایش داد. به­نظر می­رسد کاربرد توام کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا) و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین، می‌تواند عملکرد دانه تریتیکاله را تحت شرایط محدودیت آبی به‌واسطه بهبود شاخص‌های فیزیولوژیک افزایش دهد.

واژه‌های کلیدی: آنتوسیانین، عملکرد کوانتومی، محتوای کلروفیل، میکوریزا، ورمی‌کمپوست.

* نویسنده مسئول، تلفن: 09146822755، پست الکترونیکی: hamed.narimani.72@gmail.com

مقدمه

 

تریتیکاله (Triticosecale Wittmack) گیاهی ساخته دست بشر و نتیجه تلاقی گندم و چاودار است که از خصوصیات مطلوب چاودار از جمله رشد سریع و قابلیت تولید در اراضی فقیر و کم بازده و از خصوصیات برتر کیفی و زراعی گندم برخوردار است. دانه‌های تریتیکاله درشت‌تر از گندم بوده و از لحاظ میزان لایسین، اسید آمینه‌های سولفوردار و میزان پروتئین در دانه بر گندم برتری دارد. همچنین این گیاه از عملکرد مطلوبی تحت شرایط محدودیت آبی برخوردار می‌باشد (1). گیاهان در طول دوره زندگی خود در معرض عوامل تنش‌زای متعددی قرار می‌گیرند که موجب کاهش عملکرد و محدودشدن قابلیت تولید محصولات کشاورزی در سراسر جهان می‌شود (60). این تنش با تغییر ساختار درونی کلروپلاست‌ها، میتوکندری‌ها، محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی موجب تخریب کمپلکس آزادکننده اکسیژن و مرکز واکنش فتوسیستم II می‌شود و با ایجاد اختلال در تولید و استفاده از الکترون‌ها، فتوسنتز گیاهان را کاهش می‌دهد (60). محدودیت آبی موجب اختلال در سیستم فتوسنتزی می‌شود و از روش‌های تعیین اختلال در سیستم فتوسنتزی، اندازه‌گیری فلورسانس کلروفیل می‌باشد (16). مولفه‌های فلورسانس کلروفیل شامل فلورسانس حداقل (Minimum fluorescence)، فلورسانس­متغیر (Variable fluorescence) و فلورسانس حداکثر (Maximum fluorescence) است (16). در این راستا رهبریان و همکاران (2011) بیان کردند که محدودیت آبی با ایجاد خسارت به مرکز واکنش فتوسیستم II موجب تشدید فلورسانس اولیه (F0) و کاهش رنگدانه‌های فتوسنتزی می‌شود (50). همچنین، محدودیت آبی از طریق برهم‌خوردن وضعیت آبی گیاه، تخریب ساختار غشاء، میزان نیتروژن برگ و کاهش رنگدانه‌های فتوسنتزی موجب افزایش فلورسانس حداقل (F0) و کاهش فلورسانس متغیر (Fv) و فلورسانس حداکثر (Fm) برگ پرچم گندم می‌شود (20).

استفاده از کودهای زیستی نظیر قارچ‌های میکوریزا و ورمی‌کمپوست از راه‌های مناسب برای تعدیل اثر ناشی از محدودیت آبی و بهبود عملکرد تحت چنین شرایطی است که می‌تواند از طریق افزایش فراهمی عناصر غذایی ضروری مورد نیاز گیاه، مقاومت گیاهان میزبان را در برابر تنش‌های محیطی مختلف از جمله گرما، شوری، خشکی و فلزات سنگین افزایش و در نتیجه رشد و عملکرد را تحت چنین شرایطی بهبود بخشد (26) و نقش مفیدی در تجزیه مواد آلی خاک، معدنی شدن عناصر غذایی گیاهان و چرخه عناصر غذایی ایفا ‌کند (34). قارچ‌های میکوریزا با بهبود ساختار غشاء و محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، واکنش‌های نوری و انتقال الکترون در فتوسیستم II را از گیرنده اولیه به ثانویه افزایش می‌دهد که از این طریق اثر نامطلوب تنش‌های محیطی بر برداشت نور، ظرفیت تثبیت نیتروژن و انتقال الکترون به پلاستوکینون را افزایش و موجب بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل می‌شوند (38). در این زمینه خیری‌زاده آروق و همکاران (2016) اظهار داشتند که کاربرد قارچ میکوریزا تحت شرایط محدودیت آبی با بهبود وضعیت آبی، موجب افزایش محتوای کلروفیل، عملکرد کوانتومی برگ و عملکرد دانه تریتیکاله شد (40). یقینی و همکاران (1399) نیز افزایش عملکرد دانه گندم به‌واسطه کاربرد میکوریزا را، به‌ افزایش محتوای کلروفیل و عملکرد کوانتومی نسبت دادند (23).

ورمی‌کمپوست­ها به‌دلیل برخورداری از ظرفیت بالای نگهداری آب و تبادل کاتیونی، افزایش جذب عناصر غذایی و سایر خواص مفید فیزیکی، شیمیایی و بیولوژیکی می‌توانند پایداری دستگاه فتوسنتزی را در گیاهان بهبود بخشند (42). در این راستا افتاده فدافن و همکاران (1396) اظهار داشتند که کاربرد ورمی­کمپوست از طریق بهبود فعالیت­های میکروبی خاک و کمک به جذب بیشتر عناصر غذایی، ضمن افزایش محتوای کلروفیل، در کاهش فلورسانس حداقل و افزایش فلورسانس متغیر، فلورسانس حداکثر و عملکرد کوانتومی موثر است (4). یونس و همکاران (2021) نیز گزارش کردند که کاربرد ورمی‌کمپوست از طریق افزایش جذب عناصر غذایی از جمله نیتروژن، فسفر، پتاسیم، آهن و روی، موجب بهبود محتوای کلروفیل و افزایش سرعت انتقال الکترون، عملکرد کوانتومی و فلورسانس برگ ذرت شد که در نهایت با بهبود فتوسنتز خالص، موجب افزایش عملکرد دانه ذرت می‌شود (57). در بررسی نظری و همکاران (1400) نیز کاربرد قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست از طریق بهبود شاخص نیتروژن برگ پرچم، موجب بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل (فلورسانس متغیر (Fv)، فلورسانس حداکثر (Fm) و عملکرد کوانتومی (Fv/Fm))، محتوای کلروفیل و در نهایت عملکرد دانه تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی شد (21).

پلی‌آمین‌ها، از دیگر تعدیل‌کننده‌های اثرات محدودیت آبی هستند که با افزایش تحمل گیاهان نسبت به شرایط تنش موجب بهبود عملکرد می‌شود. این ترکیبات آلی نیتروژن‌دار و پلی‌کاتیون‌های با وزن مولکولی کوچک، که به‌عنوان تنظیم‌کننده رشد گیاه هستند  نقش حفاظتی در برابر آسیب غشاء و پراکسیداسیون لیپیدها دارند و در تنظیم بسیاری از فرآیندهای فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی نقش دارند (33). اسلام و همکاران (2022) بیان کردند که کاربرد پوترسین در شرایط محدودیت آبی از طریق افزایش رنگدانه‌های فلوسنتزی و بهبود عملکرد کوانتومی موجب افزایش سرعت فتوسنتز می‌شود (35). قو و همکاران (2020) نیز بیان کردند کاربرد پوترسین موجب افزایش شاخص‌های فلورسانس کلروفیل و رنگدانه‌های فتوسنتزی می‌شود (49).

مواجه شدن بخشی از دوران رشد زایشی تریتیکاله با محدودیت آبی در بیشتر مناطق خشک و نیمه­خشک و از طرفی اهمیت کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا) و پوترسین در تعدیل یا کاهش بخشی از اثر ناشی از محدودیت آبی و بررسی‌های محدود انجام شده در خصوص برهم­کنش توام این عوامل، از جمله مواردی بودند که موجب شد تا اثر این عوامل بر عملکرد، محتوای رنگدانه­های فتوسنتزی و برخص صفات فیزیولوژیک تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی مورد ارزیابی قرار گیرد.

مواد و روشها

آزمایش به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح پایه بلوک­ کامل تصادفی در سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه محقق اردبیلی با مختصات جغرافیایی 38 درجه و 15 دقیقه عرض شمالی و 48 درجه و 20 دقیقه طول شرقی و ارتفاع 1350 متر از سطح دریا در سال زراعی 99-1398 اجرا شد. محل اجرای آزمایش دارای اقلیم نیمه­خشک و سرد است. نتایج حاصل از تجزیه خصوصیات فیزیکی و شیمیایی خاک مزرعه آزمایشی در جدول 1 آورده شده است.

 

 

جدول 1- مشخصات فیزیکوشیمیایی خاک مزرعه آزمایشی

مشخصه

pH

عصاره اشباع

آهک

رس

سیلت

شن

بافت

کربن آلی

نیتروژن کل

فسفر

پتاسیم

روی

مقادیر

 

8/7

 

درصد

لومی

درصد

میلی‌گرم بر کیلوگرم

49

4/14

23

42

35

62/0

06/0

29/8

212

8/1

 

 

فاکتورهای مورد بررسی شامل آبیاری در سه سطح (آبیاری کامل در طول دوره رشدی به­عنوان شاهد و قطع آبیاری در 50 درصد مراحل چکمه­ای شدن (آبستنی) و سنبله­دهی به­ترتیب به­عنوان محدودیت شدید و ملایم آبی براساس کد 43 و 55 مقیاس ((BBCH)Biologische Bundesanstalt, Bundessortenamt and Chemical Industry)، کودهای زیستی در چهار سطح (عدم کاربرد کودهای زیستی به­عنوان شاهد، کاربرد ورمی­کمپوست، میکوریزا، کاربرد توام ورمیکمپوست و میکوریزا) و محلول­پاشی پوترسین در سه سطح (محلول­پاشی با آب به­عنوان شاهد و محلول­پاشی 4/0 و 8/0 میلی­مولار پوترسین) بود. مرحله چکمه­ای شدن یا آبستنی حساس­ترین مرحله به محدودیت آبی است که حدود دو هفته قبل از مرحله سنبله­دهی ظاهر می­شود. محلول­پاشی پوترسین (محصول شرکت Sigma با خلوص 99 درصد) در مراحل پنجه­دهی و ساقه‌دهی (به­ترتیب معادل با کد 21 و 30 از مقیاس BBCH) اعمال شد. کاشت در 16 آبان 1398 و برداشت 5 مرداد ماه 1399 بود. از تریتیکاله رقم سناباد با تراکم 400 بذر در مترمربع (که تراکم مطلوب و توصیه شده برای این رقم است) استفاده شد. این رقم دارای تیپ رشد بهاره، متوسط­رس، با ارتفاع بوته 112-110 سانتی­متر و وزن هزار دانه آن به­طور متوسط 47/45 گرم می‌باشد که نسبت به خوابیدگی مقاوم است. هر واحد آزمایشی شامل پنج خط کاشت به طول دو متر و با فاصله بین ردیفی 20 سانتی‌متر بود. به‌منظور جلوگیری از نشت آب به کرت‌های مجاور، فاصله بین هر واحد آزمایشی یک متر و نیم در نظر گرفته شد. اولین آبیاری بلافاصله بعد از کاشت و آبیاری‌های بعدی بسته به شرایط محیطی، نیاز گیاه زراعی و سطوح تیمار کم آبیاری انجام شد. قارچ میکوریزا مورد استفاده از گونه intraradices Glomus بود که از شرکت زیست فناوران توران تهیه و به میزان 20 گرم در هر متر مربع خاک (200 کیلوگرم در هر هکتار) بر اساس توصیه شرکت مذکور استفاده شد. تعداد اسپور زنده در هر گرم قارچ مورد استفاده حدود 200 اسپور بود. مقدار ورمی‌کمپوست مصرفی در این آزمایش 6 تن در هکتار در نظر گرفته شد که از شرکت گیلدا خریداری و مشخصات فیزیکوشیمیایی آن در جدول 2 آورده شده است.

 

 

جدول 2- نتایج تجزیه کود ورمی کمپوست

مشخصه

Cd

Pb

Zn

Cu

Mn

Fe

EC

dS.m-1

pH

 

(mg.kg-1)

مقادیر

1

19

110

20

275

5000

12/1

64/7

 

مشخصه

Mg

Ca

K

P

N

OC

OM

(%)

مقادیر

95/0

73/2

4/0

4/0

55/1

9/32

8/56

 

 

اندازه­گیری محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی از برگ پرچم دو هفته بعد از قطع آبیاری در مرحله سنبله‌دهی با استفاده از روش آرنون (1967) انجام شد (24). 2/0 گرم از بافت برگ پرچم را با استون 80 درصد به‌تدریج له کرده تا کلروفیل وارد محلول استونی شود و در نهایت حجم محلول با استون 80 درصد به حجم 20 میلی­­لیتر رسانده شد. محلول حاصل به مدت 10 دقیقه در 4000 دور سانتریفوژ شد و سپس جذب نوری محلول رویی در طول موج­های 470، 645 و 663 نانومتر توسط اسپکتروفتومتر قرائت شد. غلظت کلروفیل کل و کاروتنوئیدها بر اساس روابط 1 تا 4 برآورد شدند.

رابطه 1:

aمحتوای کلروفیل  = (3/19×A66386/0×A645)V/100W

رابطه 2:

bمحتوای کلروفیل  = (3/19×A6456/3×A663)V/100W

رابطه 3:

محتوای کلروفیل کل  = a کلروفیل + b کلروفیل

رابطه 4:

 محتوای کاروتنوئید = (100A47027/3Ca 104Cb)/227

در این روابط V حجم استون استفاده شده و W وزن نمونه گیاهی استفاده شده است.

برای اندازه‌گیری محتوای آنتوسیانین برگ پرچم، مقدار 05/0 گرم بافت گیاهی با چهار سی سی اسید کلریدریک یک درصد متانول در یک هاون چینی ساییده شد. محلول حاصل به مدت 24 ساعت در یخچال نگهداری شد و سپس، محلول به مدت 10 دقیقه و در 4000 دور سانتریفیوژ شد. پس از برداشتن فاز رویی، جذب محلول‌ها در طول موج 530 و 657 نانومتر نسبت به شاهد اندازه‌گیری شد و با استفاده از رابطه زیر محاسبه شد (45).

رابطه 5:                                  A=A530-(0.25×A657)

اندازه­گیری برخی صفات فیزیولوژیک در 242 روز پس از کاشت (اواسط مرحله شیری شدن معادل با کد 75 از مقیاس BBCH) انجام گرفت. برای اندازهگیری عملکرد کوانتومی برگ پرچم، در 242 روز پس از کاشت (اواسط مرحله شیری شدن معادل با کد 75 از مقیاس BBCH) توسط دستگاه فلورسانس کلروفیل (OS-30p) از هر تیمار به‌طور تصادفی شش برگ پرچم توسعه یافته (در فاصله زمانی ساعت 10-8 صبح) انتخاب و بعداز 15 دقیقه تاریکی توسط کلیپس‌های مخصوص، عملکرد کوانتومی برگ پرچم (Fv/Fm) اندازهگیری شد (40). شاخص نیتروژن برگ پرچم نیز بر اساس رابطه زیر اندازه­گیری شد (51).

رابطه 6:              × SPAD 0016322/0+017332/0 = N

هدایت روزنه‌ای برگ، توسط دستگاه پرومتر (Porometer AP4, Delta-T Devices ltd., Cambridge, UK) از هر تیمار به‌طور تصادفی چهار برگ توسعه یافته انتخاب و اندازه‌گیری شد. برای اندازه­گیری درصد محتوای نسبی آب برگ پرچم (RWC) بین ساعت 12-10 روز، از هر کرت چهار برگ پرچم توسعه‌یافته به‌طور تصادفی انتخاب و بعد از قرار دادن در فویل‌های آلومینیومی، داخل کیسه­های پلاستیکی و روی یخ قرار داده و خیلی سریع به آزمایشگاه منتقل و با استفاده از رابطه پیشنهادی کوستوپولو و همکاران (2010) محاسبه شد (41). به­منظور اندازه­گیری هدایت الکتریکی برگ پرچم در همان شرایط مربوط به اندازه­گیری درصد محتوای نسبی آب برگ پرچم، نمونه­های برگ پرچم در بشرهای محتوای 25 میلی لیتر آب مقطر (دارای EC مشخص) به مدت 24 ساعت در دمای اتاق قرار داده و سپس هدایت الکتریکی توسط دستگاه EC متر (Mi 180 Bench Meter) اندازه­گیری شد. برای اندازه‌گیری هدایت الکتریکی برگ پرچم، سعی شد نمونه­های برگی از ابعاد یکسانی برخوردار باشد. بر روی برگ پرچم اندازهگیری محتوای مالون­دی­آلدهید از روش استوارت و بولی (1980)، محتوای قندهای محلول به روش دابویس و همکاران (1956)، محتوای پرولین از روش بیتز و همکاران (1973) و پروتئین برگ پرچم با استفاده از روش برادفورد (1976) اندازه­گیری شد (53، 30، 25 و 28). عملکرد دانه از سطحی معادل 2/0 متر مربع از خطوط اصلی هر کرت بعد از حذف اثر حاشیه‌ای برآورد شد. تجزیه داده­ها و رسم نمودارها از نرم­افزارهای SAS (نسخه 1/9) و Excel (نسخه 2013) و مقایسه میانگین­ها با آزمون LSD در سطح احتمال پنج درصد انجام شدند.

نتایج

محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی برگ پرچم: نتایج تجزیه واریانس نشان داد که تاثیر کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر محتوای کلروفیل کل و کاروتنوئید برگ پرچم در سطح احتمال یک و پنچ معنی‌دار شد (جدول 3). کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل از افزایش 95/60 درصدی محتوای کلروفیل کل برگ پرچم نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی برخوردار بود (جدول 4). بیش‌ترین محتوای کاروتنوئید برگ پرچم (39/0 میلی­گرم بر گرم وزن تر برگ) نیز در کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا و محلول‌پاشی 4/0 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط آبیاری کامل مشاهده شد (جدول 4).

محتوای آنتوسیانین برگ پرچم: تاثیر کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، محلول‌پاشی پوترسین و محدودیت آبی بر محتوای آنتوسیانین در سطح احتمال یک درصد معنی‌دار شد (جدول 3). بیش‌ترین محتوای انتوسیانین برگ پرچم در تیمارهای قطع آبیاری در مرحله آبستنی (619/0 میکروگرم بر گرم وزن تر برگ)، کاربرد توام ورمی‌کمپوست با میکوریزا (615/0 میکروگرم بر گرم وزن تر برگ) و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین (596/0 میکروگرم بر گرم وزن تر برگ) مشاهده شد (جدول 5).

عملکرد کوانتومی (Fv/Fm) برگ پرچم: براساس نتایج جدول تجزیه واریانس، تاثیر کودهای زیستی، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر عملکرد کوانتومی برگ پرچم در سطح احتمال یک درصد معنی‌دار بود (جدول 3). بیش­ترین عملکرد کوانتومی برگ پرچم (719/0) در کاربرد توام ورمی­کمپوست با میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط آبیاری کامل مشاهده شد که از افزایش 09/42 درصدی نسبت به عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی برخوردار بود (جدول 4).

شاخص نیتروژن برگ پرچم: برهم­کنش توام سه عامل کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، محلول­پاشی پوترسین و محدودیت آبی بر شاخص نیتروژن برگ پرچم در سطح احتمال یک درصد معنی­دار شد (جدول 3). مقایسه میانگین‌ها نشان داد که بیش­ترین مقدار این شاخص (086/0) در کاربرد توام ورمی­کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل و کم‌ترین مقدار آن (0632/0) در عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین در شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی مشاهده شد (جدول 4).

 

 

جدول 3- تجزیه واریانس تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، محتوای آنتوسیانین، عملکرد کوانتومی، شاخص نیتروژن، هدایت روزنه‌ای و محتوای نسبی آب برگ پرچم تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

منابع تغییر

درجه آزادی

میانگین مربعات

کلروفیل کل

کاروتنوئید

آنتوسیانین

عملکرد کوانتومی

شاخص نیتروژن

هدایت روزنه‌ای

محتوای نسبی آب

تکرار

2

**78/1

**202/0

**035/0

**009/0

**0006/0

**65/21

**7/932

محدودیت آبی (I)

2

**76/9

**024/0

**085/0

**093/0

**0007/0

**82/55

**7/625

کودهای زیستی (B)

3

**11/6

**016/0

**058/0

**036/0

**0004/0

**33/28

**6/423

پوترسین (P)

2

**24/3

**012/0

**034/0

**021/0

**0004/0

**59/17

**5/286

I×B

6

*1/0

ns0003/0

ns002/0

ns0008/0

ns000008/0

**99/2

**9/32

I×P

4

ns03/0

*0006/0

ns0008/0

ns016/0

ns00001/0

*72/2

**8/31

B×P

6

**15/0

ns0003/0

ns001/0

ns001/0

ns000009/0

**19/3

**2/27

I×B×P

12

**11/0

**0008/0

ns002/0

**002/0

**00002/0

**45/3

**7/64

خطا

70

04/0

0002/0

125/0

001/0

000008/0

87/0

96/8

ضریب تغییرات (%)

-

03/4

49/4

51/7

26/5

93/3

25/5

37/5

ns، * و ** به­ترتیب غیرمعنی­دار و معنی­دار در سطح احتمال پنج و یک درصد.

 

جدول 4- مقایسه میانگین تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، عملکرد کوانتومی، شاخص نیتروژن، هدایت روزنه‌ای و محتوای نسبی آب برگ پرچم تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

ترکیب تیماری

کلروفیل کل

کاروتنوئید

عملکرد کوانتومی

شاخص نیتروژن

هدایت روزنه‌ای (mmol.m-2.s-1)

محتوای نسبی آب (%)

میلی­گرم بر گرم وزن تر برگ

I1×B1×P1

jk775/4

klmnop301/0

lmnop57/0

mnopq0701/0

pqrst9/15

rstuvw36/50

I1×B2×P1

hij066/5

jklm314/0

fghijkl615/0

klmno072/0

ghijklm93/17

opqrstu13/52

I1×B3×P1

efgh381/5

ghij334/0

cdefg657/0

ghijk0762/0

efghi6/18

fghijklm6/58

I1×B4×P1

ab99/5

abc379/0

abc699/0

abcd831/0

abcde9/19

abcde8/63

I1×B1×P2

ij04/5

jklmn311/0

hijklmn595/0

hijklm0749/0

nopqrst33/16

nopqrs43/53

I1×B2×P2

cdef533/5

efgh343/0

bcdefg66/0

abcde0822/0

cdefgh19

bcdefghi13/61

I1×B3×P2

bc814/5

bcde366/0

abcdef668/0

abcd0826/0

abc5/20

abcdef43/63

I1×B4×P2

ab113/6

a39/0

ab71/0

abc0844/0

ab63/20

abc06/65

I1×B1×P3

cde652/5

abc375/0

abcd69/0

bcdef0811/0

abcdef76/19

ijklmnop46/56

I1×B2×P3

ab01/6

ab383/0

abc707/0

abcd0838/0

abc2/20

abcd63/64

I1×B3×P3

ab099/6

ab384/0

ab712/0

ab0851/0

a21

ab96/65

I1×B4×P3

a15/6

ab387/0

a719/0

a086/0

ab7/20

a96/66

I2×B1×P1

klmn463/4

klmno305/0

lmnop568/0

nopq0692/0

ijklmno43/17

jklmnopq9/55

I2×B2×P1

lmn334/4

nopq288/0

jklmnop574/0

opqr0679/0

ghijklm9/17

uvwx46/47

I2×B3×P1

jk766/4

jklm312/0

ijklmno588/0

nopq0693/0

stu4/15

opqrst66/52

I2×B4×P1

efg437/5

defg349/0

efghi63/0

defgh0791/0

fghijkl26/18

ghijklmn93/57

I2×B1×P2

n234/4

opq285/0

klmnop472/0

qr0658/0

ijklmnop3/17

xy3/45

I2×B2×P2

kl614/2

lmnop296/0

opq535/0

jklmno0727/0

opqrst2/16

rstuvwx86/49

I2×B3×P2

ij949/4

ghi339/0

hijklmn597/0

ijklmn0738/0

klmnopqr03/17

lmnopqr4/54

I2×B4×P2

bcd785/5

abcd37/0

bcdef665/0

abcdef0819/0

bcdefg36/19

bcdefgh83/61

I2×B1×P3

kl614/4

ijkl317/0

mnop56/0

lmnop0712/0

qrst66/15

pqrstu06/52

I2×B2×P3

fghi256/5

fghi341/0

fghijk624/0

efghi0778/0

hijklmno5/17

defghijk76/59

I2×B3×P3

cde603/5

bcdef364/0

defghi639/0

cdefgh0797/0

defghi8/18

cdefghij53/60

I2×B4×P3

abc851/5

abc375/0

abcde678/0

abcde0824/0

abcdef6/19

abcdefg5/62

I3×B1×P1

o821/3

q265/0

q506/0

r0632/0

u14

y46/42

I3×B2×P1

lmn368/4

klmno303/0

jklmnop577/0

lmnop0707/0

hijklmn73/17

ijklmnop43/56

I3×B3×P1

mn273/4

mnop293/0

pq533/0

pqr067/0

tu36/15

vwxy47

I3×B4×P1

hij048/5

ijkl318/0

lmnop566/0

klmno0722/0

lmnopqrs9/16

qrstuv3/51

I3×B1×P2

n203/4

lmnop298/0

lmnop565/0

mnopq0703/0

ijklmnop3/17

hijklmno57

I3×B2×P2

n21/4

pq279/0

opq539/0

opq0685/0

mnopqrst46/16

tuvwx96/47

I3×B3×P2

lmn361/4

opq286/0

nopq546/0

mnopq0704/0

mnopqrst66/16

stuvwx16/49

I3×B4×P2

efgh38/5

ghij332/0

fghij625/0

fghij0773/0

ghijklm96/17

ijklmnop9/56

I3×B1×P3

lmn326/4

opq281/0

pq529/0

opq068/0

rst56/15

wxy2/46

I3×B2×P3

klm59/4

klmno305/0

nopq554/0

lmnop0708/0

jklmnopq16/17

mnopqrs86/53

I3×B3×P3

ghi192/5

hijk323/0

ghijklm607/0

ghijkl0754/0

hijklmno6/17

klmnopq56/55

I3×B4×P3

defg479/5

cdefg355/0

defgh646/0

cdefg0802/0

efghijk5/18

efghijkl06/59

LSD

3337/0

0241/0

0525/0

0048/0

525/1

876/4

I1، I2 و I3 به­ترتیب آبیاری کامل و قطع آبیاری در مراحل سنبله‌دهی و آبستنی. B1، B2، B3 و B4 به­ترتیب عدم کاربرد کودهای زیستی، کاربرد ورمی‌کمپوست، کاربرد میکوریزا، کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا. P1، P2 وP3  به­ترتیب عدم محلول­پاشی پوترسین و محلول‌پاشی 4/0 و 8/0 میلی‌مولار پوترسین. میانگین­های با حروف مشابه در هر ستون اختلاف آماری معنی­داری بر اساس آزمون LSD با هم ندارند.

 

 

هدایت روزنه‌ای برگ پرچم: براساس نتایج جدول تجزیه واریانس، تاثیر کودهای زیستی، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر هدایت روزنه‌ای برگ پرچم در سطح احتمال یک و پنج درصد معنی‌دار بود (جدول 3). نتایج مقایسه میانگین نشان داد که کاربرد میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل موجب افزایش 50 درصدی هدایت روزنه‌ای برگ پرچم نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی شد (جدول 4).

محتوای نسبی آب برگ پرچم: نتایج تجزیه واریانس نشان داد که تاثیر کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر محتوای نسبی آب برگ پرچم در سطح احتمال یک درصد معنی‌دار شد (جدول 3). کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل از بیش‌ترین محتوای نسبی آب برگ پرچم (96/66 درصد) برخوردار بود، طوری که این ترکیب تیماری از افزایش 7/57 درصدی محتوای نسبی آب برگ پرچم نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی برخوردار بود (جدول 4).

 

 

جدول 5- مقایسه میانگین اثرات اصلی کاربرد کودهای زیستی، پوترسین و محدودیت آبی بر محتوای آنتوسیانین تریتیکاله

تیمار

آنتوسیانین (میکروگرم بر گرم وزن تر برگ)

I1

b531/0

I2

a54/0

I3

a619/0

LSD

0199/0

B1

c502/0

B2

b568/0

B3

b584/0

B4

a615/0

LSD

023/0

P1

c535/0

P2

b558/0

P3

a596/0

LSD

0199/0

I1، I2 و I3 به­ترتیب آبیاری کامل و قطع آبیاری در مراحل سنبله‌دهی و آبستنی. B1، B2، B3 و B4 به­ترتیب عدم کاربرد کودهای زیستی، کاربرد ورمی‌کمپوست، کاربرد میکوریزا، کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا. P1، P2 وP3  به­ترتیب عدم محلول­پاشی پوترسین و محلول‌پاشی 4/0 و 8/0 میلی‌مولار پوترسین. میانگین­های با حروف مشابه در هر ستون اختلاف آماری معنی­داری بر اساس آزمون LSD با هم ندارند.

 

 

هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم: تاثیر کودهای زیستی، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم در سطح احتمال یک درصد معنی‌دار شد (جدول 6). براساس نتایج مقایسه میانگین­ها، بیش‌ترین هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم (به‌ترتیب 5/239 میکروزیمتس بر مترمربع و 28/0 میکرومول بر گرم وزن تر برگ) در ترکیب تیماری عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی مشاهده شد که از افزایش به‌ترتیب 01/54 و 17/52 درصدی هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم نسبت به شرایط کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل برخوردار بود (جدول 7).

محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم: براساس نتایج جدول تجزیه واریانس، تاثیر کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم در سطح احتمال یک درصد معنی‌دار بود (جدول 6). نتایج مقایسه میانگین نشان داد که کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی موجب افزایش 54/47 و 03/51 درصدی محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین در شرایط آبیاری کامل شد (جدول 7).

درصد پروتئین برگ پرچم: کاربرد کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، محلول‌پاشی پوترسین، محدودیت آبی و برهم‌کنش توام این سه عامل بر درصد پروتئین برگ پرچم در سطح احتمال یک و پنج درصد معنی‌دار شد (جدول 6). بیش­ترین درصد پروتئین برگ پرچم (66/12 درصد) در کاربرد توام ورمی­کمپوست، میکوریزا و محلول­پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل مشاهده شد (جدول 7) که از افزایش 04/59 درصدی درصدی نسبت به عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی برخوردار بود (جدول 7).

 

 

جدول 6- تجزیه واریانس تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر هدایت الکتریکی، محتوای مالون‌دی‌آلدهید، قندهای محلول، پرولین، درصد پروتئین و عملکرد دانه تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

منابع تغییر

درجه آزادی

میانگین مربعات

هدایت الکتریکی

مالون‌دی‌آلدهید

قندهای محلول

پرولین

پروتئین

عملکرد دانه

 

تکرار

2

**6/820

**015/0

**2/5003

**28/6

**79/3

**3/48446

 

محدودیت آبی (I)

2

**6/7717

**01/0

**9/1923

**14

**7/28

**9/61274

 

کودهای زیستی (B)

3

**4/4301

**011/0

**2/1669

**4/10

**5/20

**3/37178

 

پوترسین (P)

2

**9/5370

**005/0

**9/830

**5/3

**3/12

**8/23827

 

I×B

6

**444

ns00018/0

**1/107

ns085/0

ns33/0

**5118

 

I×P

4

ns2/113

ns00018/0

ns8/30

**15/1

*9/1

ns3/38

 

B×P

6

ns2/120

**0003/0

**6/92

**54/0

ns46/0

**5605

 

I×B×P

12

**8/694

**00033/0

**6/168

**96/0

**7/1

*1861

 

خطا

70

4/98

00009/0

7/26

17/0

69/0

796

 

ضریب تغییرات (%)

-

14/5

3/4

83/4

19/5

01/8

19/5

 

ns، * و ** به­ترتیب غیرمعنی­دار و معنی­دار در سطح احتمال پنج و یک درصد.

جدول 7- مقایسه میانگین تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر هدایت الکتریکی، محتوای مالون‌آلدهید، قندها محلول، پرولین، درصد پروتئین و عملکرد دانه تریتیکاله تحت شرایط محدودیت آبی

ترکیب تیماری

هدایت الکتریکی (میکروزیمتس بر مترمربع)

مالون‌دی‌آلدهید (میکرومول بر گرم وزن تر برگ)

قندهای محلول (میلی­گرم بر گرم وزن تر برگ)

پرولین (میکروگرم بر گرم وزن تر برگ)

محتوای پروتئین (درصد)

عملکرد دانه (گرم در متر مربع)

I1×B1×P1

cdefg211

defgh248/0

u6/85

v543/6

ghijkl18/9

pqrs42/518

I1×B2×P1

fghijk3/197

ijklm231/0

qrstu92

stuv877/6

efghij84/9

lmno31/539

I1×B3×P1

klmno9/181

klmno224/0

pqrstu6/93

qrstuv179/7

cdef59/11

ghij58/566

I1×B4×P1

opqrst2/166

stuv194/0

hijklm8/106

klmnop893/7

ab38/12

bc78/610

I1×B1×P2

defgh5/205

ghijk236/0

tu9/86

tuv739/6

fghijk46/9

nopq21/529

I1×B2×P2

lmnopq1/178

pqrstu204/0

opqrs5/95

opqrst402/7

abcd53/11

efgh95/578

I1×B3×P2

pqrst9/164

rstuv198/0

klmnop7/101

mnopqr619/7

ab09/12

cIe25/597

I1×B4×P2

st8/158

uv188/0

cdefgh3/114

ghijkl322/8

ab38/12

ab49/619

I1×B1×P3

nopqrs8/171

opqr212/0

stu89

rstuv057/7

abc81/11

Iefg56/586

I1×B2×P3

qrst4/162

tuv192/0

ijklmn7/104

hijklmn162/8

ab19/12

abc88/612

I1×B3×P3

rst7/160

uv188/0

fghijk9/108

hijklm23/8

a57/12

ab11/620

I1×B4×P3

t5/155

v184/0

bcdef4/116

defghi796/8

a66/12

a59/632

I2×B1×P1

fghij7/198

ab274/0

ijklm4/105

hijklmn202/8

kl43/8

xyz28/466

I2×B2×P1

abc7/223

ijklmn229/0

opqrst1/95

uv648/6

ijkl71/8

wxyz65/469

I2×B3×P1

cdefg3/209

ghijkl234/0

mnopqr6/98

nopqrs521/7

efghij84/9

qrs73/512

I2×B4×P1

ijklmn6/187

nopq215/0

efghij1/110

efghijk503/8

bcde06/11

ijkl94/555

I2×B1×P2

ab1/230

bcde258/0

rstu8/90

rstuv008/7

efghij84/9

uvwx14/483

I2×B2×P2

efghi8/202

cdef253/0

jklmno3/103

klmnopq822/7

defg21/10

rst87/507

I2×B3×P2

efghij6/200

jklmno225/0

jklmn3/104

klmnop95/7

defg21/10

mnop36/533

I2×B4×P2

nopqrs9/172

qrstu201/0

abcd5/119

bcde103/9

abc62/11

Ief2/589

I2×B1×P3

bcde215

bcd261/0

nopqrs8/96

pqrstu305/7

fghijk55/9

tuv43/492

I2×B2×P3

ijklm1/189

pqrs208/0

cdefgh6/114

cdefg953/8

cdef68/10

jklm77/549

I2×B3×P3

mnopqr175

qrst207/0

abcd7/120

cdef058/9

abcd53/11

hijk24/565

I2×B4×P3

opqrst168

stuv196/0

abc3/122

cdefg967/8

abc81/11

bcI5/603

I3×B1×P1

a5/239

a28/0

lmnopq100

lmnopq774/7

l96/7

z13/453

I3×B2×P1

fghij2/198

ijklmn23/0

efghi4/110

fghijkl402/8

efgh12/10

yz43/458

I3×B3×P1

bcd1/220

cde256/0

defghi8/112

cdefgh847/8

efghi02/10

vwxy81/477

I3×B4×P1

cdef3/212

hijkl233/0

ab2/123

abcd441/9

efghij84/9

opqr91/523

I3×B1×P2

ghijk8/195

abc265/0

ghijk3/107

jklmno051/8

efghij84/9

yz73/460

I3×B2×P2

bcd5/221

defgh249/0

abcde2/118

abcde193/9

jkl61/8

stu01/499

I3×B3×P2

bcd1/219

efghi244/0

abcd1/121

abc49/9

ghijkl18/9

stu59/500

I3×B4×P2

jklmn9/184

mnop217/0

ijklm2/105

ab776/9

cdef68/10

ijkl68/554

I3×B1×P3

hijklm190

cdefg25/0

bcdefg7/115

efghij643/8

hijkl8/8

tuvw24/489

I3×B2×P3

fghijk6/196

fghij24/0

ijklm3/105

jklmno091/8

fghijk37/9

pqrs03/515

I3×B3×P3

hijkl2/192

lmnop219/0

a3/125

ijklmn155/8

efghij93/9

klmn36/545

I3×B4×P3

lmnop179

opqrs21/0

a3/126

a882/9

bcde06/11

fghi86/571

LSD

158/16

0159/0

419/8

69/0

361/3

025/20

I1، I2 و I3 به­ترتیب آبیاری کامل و قطع آبیاری در مراحل سنبله‌دهی و آبستنی. B1، B2، B3 و B4 به­ترتیب عدم کاربرد کودهای زیستی، کاربرد ورمی‌کمپوست، کاربرد میکوریزا، کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا. P1، P2 وP3  به­ترتیب عدم محلول­پاشی پوترسین و محلول‌پاشی 4/0 و 8/0 میلی‌مولار پوترسین. میانگین­های با حروف مشابه در هر ستون اختلاف آماری معنی­داری بر اساس آزمون LSD با هم ندارند.

 

عملکرد دانه: برهم‌کنش توام کودهای زیستی (ورمی‌کمپوست و میکوریزا)، محلول‌پاشی پوترسین و محدودیت آبی بر عملکرد دانه در سطح احتمال پنج درصد معنی‌دار شد (جدول 6). بیش­ترین عملکرد دانه (59/632 گرم در مترمربع) در کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول­پاشی پوترسین در شرایط آبیاری کامل مشاهده شد (جدول 7)، که از افزایش 6/39 درصدی عملکرد دانه نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی برخوردار بود (جدول 7).

بحث و نتیجه گیری

محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی برگ پرچم: به‌نظر می‌رسد محدودیت آبی، فلورسانس حداکثر و فلورسانس متغیر را به‌دلیل ممانعت از فتواکسیداسیون فتوسیستم II و ایجاد اختلال در انتقال الکترون به فتوسیستم I، کاهش می‌دهد که از این طریق با محدود کردن عملکرد کوانتومی گیاه موجب تخریب و کاهش رنگدانه‌های فتوسنتزی می‌شود (جدول 4) (48). از طرفی میزان کاهش محتوای کلروفیل کل و کارتنوئید در شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی به مراتب بیشتر از قطع آبیاری در مرحله سنبله‌دهی است زیرا مرحله آبستنی در مقایسه با مرحله سنبله­دهی حساس به کمبود آب است از این رو قطع آبیاری در مرحله آبستنی نسبت به مرحله سنبله‌دهی، به‌دلیل محدودیت بیشتر و زودتر جذب عناصر عذایی از جمله نیتروژن و کاهش محتوای نسبی آب گیاه، با ایجاد اختلال در سیستم فتوسنتزی و عملکرد کوانتومی موجب تخریب بیشتر کلروفیل می‌شود (21). بخشی از افزایش محتوای کلروفیل و کاروتنوئید تحت همزیستی ریشه گیاه با قارچ میکوریزا را می‌توان به اثر مثبت این قارچ در جذب عناصر غذایی مورد نیاز از قبیل نیتروژن و منیزیم نسبت داد (26) که از عناصر اصلی ساختار کلروفیل به حساب می‌آیند. نتایج مشابهی نیز توسط هاشم و همکاران (2019) مبنی بر اینکه کاربرد میکوریزا تحت شرایط محدودیت آبی از طریق افزایش جذب نیتروژن و فسفر موجب بهبود محتوای کلروفیل و کاروتنوئید برگ نخود می‌شود گزارش شده است (34). الجازع (1396) نیز افزایش رنگدانه‌های فتوسنتزی به‌واسطه کاربرد پوترسین را وجود نیتروژن در ساختار پلی‌آمین‌ها نست داد و اظهار داشت که پلی‌آمین‌ها با جلوگیری از تولید اتیلن و نقش حفاظتی که در برابر غشاء تیلاکوئید دارند مانع تجزیه کلروفیل و کاروتنوئید می‌شوند (10). بخش دیگری از افزایش رنگدانه‌های فتوسنتزی به‌واسطه محلول‌پاشی پوترسین را می‌توان به بهبود عملکرد کوانتومی برگ پرچم نسبت داد (جدول 4)، در این زمینه اسلام و همکاران (2022) اظهار داشتند کاربرد پوترسین با بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل (فلورسانس حداکثر، فلورسانس متغیر و عملکرد کوانتومی) موجب کاهش تولید گونه‌های فعال اکسیژن و افزایش رنگدانه‌های فتوسنتزی تحت شرایط محدودیت آبی شد (35). همچنین گزارش شده است که کاربرد توام قارچ میکوریزا و پوترسین در شرایط محدودیت آبی، از طریق کاهش پراکسیداسیون لیپیدی و هدایت الکتریکی برگ، ضمن بهبود عملکرد کوانتومی موجب افزایش محتوای کلروفیل برگ ماشک گل خوشه‌ای شد (14). بخشی از افزایش محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی با کاربرد ورمی‌کمپوست تحت شرایط تنش را می‌توان به بالا بودن غلظت آهن، روی و نیتروژن موجود در ورمی‌کمپوست (جدول 2) نسبت دادن که از عناصر اساسی در سنتز کلروفیل محسوب می‌شود. نتایج مشابهی نیز توسط محمدی کله‌سرلو و همکاران (1400) مبنی بر افزایش محتوای کلروفیل با کاربرد ورمی‌کمپوست تحت شرایط تنش گزارش شده است (19). بخشی از افزایش محتوای کلروفیل کل را در شرایط کاربرد ورمی­کمپوست می‌توان به افزایش برخی اسمولیت­های سازگار همچون پرولین و قندهای محلول و کاهش محتوای مالون دی­الدئید (جدول 7) نسبت داد. در این راستا برخی محققین نیز بیان کردند که کاربرد ورمی­کمپوست در شرایط محدودیت آبی، به‌دلیل بهبود جذب فسفر و نیتروژن و افزایش تولید قندهای محلول و پرولین، ضمن کاهش محتوای مالون‌دی‌آلدهید و افزایش پایداری غشاء موجب افزایش محتوای کلروفیل برگ کلزا شد (44). نظری و همکاران (1400) نیز افزایش محتوای کلروفیل به‌واسطه کاربرد توام قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست در شرایط محدودیت آبی را به افزایش جذب نیتروژن، بهبود محتوای نسبی آب و عملکرد کوانتومی و کاهش هدایت الکتریکی برگ تریتیکاله نسبت دادند (21).

محتوای آنتوسیانین برگ پرچم: در شرایط تنش، میزان فعالیت آنتی‌اکسیدانی و سنتز ترکیبات با خاصیت آنتی‌اکسیدانی برای محافظت از گیاه افزایش می‌یابد. آنتوسیانین‌ها ترکیباتی با خاصیت آنتی‌اکسیدانی هستند و افزایش محتوای آن‌ها منجر به افزایش ظرفیت آنتی‌اکسیدانی می‌شود (58). فراهمی نیتروژن می‌تواند بر سنتز متابولیت‌های ثانویه از جمله آنتوسیانین از طریق افزایش فعالیت فنیل آلانین آمونیاک لیاز (PLA) تاثیر بگذارد (58)، از آنجایی که پلی‌آمین‌ها ترکیباتی هستند که در ساختار خود نیتروژن دارند، احتمالا محلول‌پاشی پلی‌آمین‌ها با افزایش میزان نیتروژن و بهبود محتوای کربوهیدرات و همچنین ظرفیت آنتی‌اکسیدانی گیاه، موجب افزایش محتوای آنتوسیانین شده است (58). به‌طور کلی پلی‌آمین‌ها از طریق تاثیر بر بیان ژن‌های دخیل در بیوسنتز ترکیبات فنلی و آنتوسیانین نظیر فنیل‌آلانین آمونیالیاز (Phenylalanin amonia lyase PAL) و چالکون ایزومراز (Chalcone isomerase) موجب افزایش محتوای آنتوسیانین می‌شوند (55). همچنین پوترسین از طریق کاهش پیری و همچنین کاهش تنفس و تولید اتیلن موجب می‌شود که تجزیه ترکیبات فنلی از جمله آنتوسیانین کاهش یابد (39). پوترسین با کاهش انسداد آوندی، کاهش سنتز اتیلن و افزایش فشار اسمزی موجب افزایش سنتز رنگدانه‌ها و در نتیجه بهبود محتوای آنتوسیانین می‌شود (29).

بخشی از بهبود محتوای آنتوسیانین برگ پرچم به‌واسطه کاربرد ورمی‌کمپوست را می‌توان به افزایش فراهمی عناصر عذایی (جدول 2) نسبت داد، در این راستا تئونیسن و همکاران (2010) اظهار داشتند که درصد بالای هیومیک اسید موجود در ورمی‌کمپوست و همچنین، افزایش محتوای عناصر غذایی از جمله نیتروژن، فسفر، پتاسیم، کلسیم، منیزیم، گوگرد، آهن، منگنز، روی و مس موجب بهبود محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی و افزایش ساخت ترکیبات فنولیک همچون آنتوسیانین می‌شود (54). همچنین گزارش شده است، ریشه تلقیح شده با ورمی‌کمپوست و میکوریزا توانایی ساخت و ترشح مواد زیستی فعال مانند ویتامین‌های گروه B، اسید نیکوتنیک، اسید پنتوتنیک، بیوتین، اکسین‌ها، جیبرلین‌ها و غیره را دارند که این مواد موجب افزایش محتوای ماده آلی و هیدرات‌های کربن گیاه و در نتیجه افزایش آنتوسیانین می‌شود (22).

عملکرد کوانتومی (Fv/Fm) برگ پرچم: محدودیت آبی از طریق تخریب رنگدانه‌های فتوسنتزی، جلوگیری از فتواکسیداسیون فتوسیستم II و ایجاد اختلال در انتقال الکترون به فتوسیستم I منجر به افزایش فلورسانس حداقل (F0) و کاهش فلورسانس حداکثر (Fm) میشود که در نهایت عملکرد کوانتومی را کاهش می‌دهد (48). مرحله آبستنی در مقایسه با مرحله سنبله­دهی حساس به کمبود آب است از این رو قطع آبیاری در مرحله آبستنی نسبت به مرحله سنبله‌دهی، به‌دلیل محدودیت بیشتر و زودتر در جذب آب و کاهش بیشتر محتوای نسبی آب گیاه، با ایجاد اختلال در سیستم فتوسنتزی موجب کاهش بیشتر عملکرد کوانتومی در مقایسه با قطع آبیاری در مرحله سنبله‌دهی شد. بخشی از بهبود عملکرد کوانتومی برگ پرچم تحت شرایط محدودیت آبی به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست را، می‌توان به افزایش شاخص نیتروژن و محتوای کلروفیل نسبت داد (جدول 4). کاربرد قارچ میکوریزا، واکنش‌های نوری و انتقال الکترون در فتوسیستم II را از گیرنده اولیه به ثانویه افزایش می‌دهد که از این طریق اثرات نامطلوب تنش‌های محیطی بر برداشت نور، ظرفیت تثبیت نیتروژن و انتقال الکترون به پلاستوکینون را افزایش و همچنین با بهبود محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی موجب بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل و عملکرد کوانتومی می‌شوند (38). ظفری و همکاران (2016) اظهار داشتند که کاربرد قارچ میکوریزا به‌دلیل بهبود جذب نیتروژن، موجب افزایش محتوای قندهای محلول و پرولین می‌شود که از طریق تنظیم پتانسیل اسمزی و افزایش محتوای نسبی آب، عملکرد کوانتومی برگ را افزایش می‌دهد (59). به‌نظر می‌رسد کاربرد ورمی‌کمپوست در شرایط محدودیت آبی نیز به‌دلیل نقش موثر در جذب و نگهداری عناصر و بهبود رنگدانه‌های فتوسنتزی، موجب افزایش فلورسانس متغیر و فلورسانس حداکثر و در نهایت بهبود نسبت Fv/Fm می‌شود (8). در این راستا افتاده فدافن و همکاران (1396) اظهار داشتند که کاربرد ورمی‌کمپوست از طریق بهبود فعالیت­های میکروبی خاک و کمک به جذب بیشتر عناصر غذایی، ضمن افزایش رنگدانه‌های فتوسنتزی، در کاهش فلورسانس حداقل و افزایش فلورسانس متغیر، فلورسانس حداکثر و عملکرد کوانتومی تاثیر داشت (4). همچنین گزارش شده است که کاربرد توام قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست به‌دلیل افزایش جذب نیتروژن و بهبود محتوای نسبی آب، محتوای کلروفیل و کاهش هدایت الکتریکی برگ، موجب افزایش عملکرد کوانتومی برگ تریتیکاله در شرایط محدودیت آبی شد (21). بخش دیگری از بهبود عملکرد کوانتومی برگ به‌واسطه کاربرد پوترسین را می‌توان به افزایش رنگدانه‌های فتوسنتزی نسبت داد (49). در این راستا اسلام و همکاران (2022) گزارش کردند، محلول‌پاشی پوترسین تحت شرایط محدودیت آبی از طریق بهبود سیستم آنتی‌اکسیدانی گیاه و جلوگیری از کاهش رنگدانه‌های فتوسنتزی به‌وسیله گونه‌های فعال اکسیژن، ضمن بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل (فلورسانس حداکثر و فلورسانس متغیر)، موجب افزایش عملکرد کوانتومی شد (35). همچنین، سیدشریفی و همکاران (1399) بیان کردند که کاربرد توام قارچ میکوریزا و پوترسین در شرایط محدودیت آبی از طریق کاهش محتوای کلروفیل و افزایش هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید، موجب افزایش عملکرد کوانتومی برگ ماشک گل خوشه‌ای شد (14). در این بررسی نیز به‌نظر می‌رسد کاربرد توام ورمی‌کمپوست و میکوریزا و محلول‌پاشی پوترسین با بهبود رنگدانه‌های فتوسنتزی (جدول 4)، موجب افزایش عملکرد کوانتومی (Fv/Fm) برگ پرچم شد (جدول 4).

شاخص نیتروژن برگ پرچم: نیتروژن عمدتا به‌صورت جریان توده‌ای توسط ریشه گیاه جذب می‌شود و در خاک‌هایی که با محدودیت آبی مواجه است، جذب آن به‌دلیل اختلال در فرآیندهای فیزیولوژیکی از جمله کاهش میزان تعرق، کاهش می‌یابد. همچنین گزارش شده است که کاهش پتانسیل آب خاک موجب کاهش سطح تماس نیتروژن با ریشه و کاهش تحرک عناصر غذایی در خاک می‌شود که در نهایت موجب کاهش محتوای نیتروژن در اندام هوایی می‌شود (52). در این راستا نیکبختایی و همکاران (2008) اظهار داشتند که تنش خشکی جذب مواد غذایی به‌وسیله ریشه‌ها و انتقال این مواد به ساقه را کاهش می‌دهد که این کاهش به‌دلیل محدود شدن سرعت تعرق، آسیب رساندن به انتقال فعال و کاهش قابلیت نفوذ غشایی است. زیرا جذب مواد غذایی از محلول خاک با وضعیت آب خاک ارتباط دارد و با کاهش رطوبت خاک، جریان انتشاری مواد غذایی به سطح ریشه کاهش می‌یابد (47). ولی در چنین شرایطی کاربرد قارچ میکوریزا می‌تواند با افزایش سطح جذب ریشه از طریق تولید شبکه گسترده‌ای از هیف‌ها و همچنین ترشح اسیدهای عالی که منجر به افزایش محلولیت و دسترسی بیشتر به عناصر غذایی در محیط اطراف ریشه (رایزوسفر) می‌شود، موجب افرایش جذب نیتروژن می‌شود (26). در این راستا ساجدی و همکاران (1389) بیان کردند که قارچ میکوریزا در شرایط محدودیت آبی به‌دلیل بهبود روابط آبی گیاه و افزایش فشار تورگر و همچنین با افزایش سطح جذب ریشه از طریق انتشار میسلیوم‌های خارجی خود، به منافذ ریز خاک  نفوذ می کند که امکان ورود ریشه‌های موئین برای جذب آب در شرایط عادی در چنین مناطقی وجود ندارد که با این نفوذ ضمن جذب آب و عناصر غذایی و انتقال آن به گیاه، در نهایت موجب افزایش محتوای نیتروژن می‌شود (13). بالا بودن محتوای نیتروژن موجود در ورمی­کمپوست مورد استفاده (جدول 2) که از عناصر اساسی در سنتز کلروفیل محسوب می‌شوند از دیگر دلایل افزایش شاخص نیتروژن تحت چنین شرایطی است. با حضور نیتروژن در ورمی­کمپوست، احتمالا میزان دسترسی گیاهان به نیتروژن خاک به شکل نیترات افزایش یافته (36) و فعالیت نیترات ردوکتاز، نیتریت ردوکتاز، گلوتامین سنتتاز و گلوتامات سنتاز در مواجه با تنش نیز افزایش می­یابد (37). نظری و همکاران (1400) نیز اظهار داشتند که کاربرد توام قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست با افزایش فراهمی و بهبود جذب نیتروژن، موجب افزایش شاخص نیتروژن برگ تریتیکاله در شرایط محدودیت آبی شد (21). رضوانی‌پور (1394) اظهار داشت محلول‌پاشی پلی‌آمین‌ها موجب بهبود ساختار ریشه از طریق افزایش درصد ریشه‌های مویین و کاهش ریشه‌های ضحیم می‌شود، که این تغییرات موجب بهبود جذب عناصر و افزایش غلظت عناصر غذایی از جمله نیتروژن در گیاه می‌شود (12). بخش دیگری از افزایش شاخص نیتروژن را می‌توان به وجود نیتروژن در ساختار پلی‌آمین‌ها نسبت داد که موجب افزایش محتوای نیتروژن در گیاه می‌شود (10).

هدایت روزنه‌ای برگ پرچم: به‌نظر می‌رسد محدودیت آبی با کاهش در محتوای نسبی آب برگ‌ها موجب کاهش پتانسیل آب برگ در شرایط محدودیت آبی می‌شود که در چنین شرایطی با بسته شدن روزنه‌ها موجب کاهش هدایت روزنه‌ای و در نهایت کاهش سرعت فتوسنتز و متعاقبا کاهش رشد گیاه می‌شود (27). بخشی از افزایش هدایت روزنه‌ای برگ پرچم به‌واسطه کاربرد ورمی‌کمپوست را می‌توان به عناصر غذایی موجود در ورمی‌کمپوست مورد استفاده (جدول 2) و افزایش محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، قندهای محلول و پرولین برگ پرچم (جدول 4 و 7) و کاهش هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم (جدول 7) نسبت داد، در این راستا گزارش شده است که کاربرد ورمی­کمپوست در چنین شرایطی از طریق افزایش جذب نیتروژن و بهبود محتوای کلروفیل موجب افزایش تولید قندهای محلول و پرولین در گیاه می‌شود که ضمن بهبود پتانسیل آب برگ‌ها و کاهش پراکسیداسیون لیپیدی و افزایش پایداری غشاء موجب افزایش محتوای نسبی آب و هدایت روزنه‌ای برگ کلزا شد (44). همچنین برخی محققین، افزایش هدایت هیدرولیکی خاک، کاهش مقاومت روزنه‌ای به‌وسیله تغییر در تعادل هورمون‌های گیاهی و جذب بیش‌تر آب توسط گیاه را، از دلایل اصلی افزایش هدایت روزنه‌ای در کاربرد میکوریزا عنوان کردند (15). بخش دیگری از افزایش هدایت روزنه‌ای برگ پرچم (جدول 4) به‌واسطه کاربرد میکوریزا را می‌توان به افزایش محتوای نسبی آب، محتوای کلروفیل و عملکرد کوانتومی برگ پرچم (جدول 4) نسبت داد که در این راستا خیری‌زاده آروق و همکاران (1397) بیان کردند که کاربرد میکوریزا در شرایط تنش با بهبود محتوای نسبی آب، محتوای کلروفیل و عملکرد کوانتومی برگ پرچم، موجب افزایش هدایت روزنه‌ای برگ پرچم تریتیکاله شد (11). محسنی محمدجانلو و همکاران (1401) بیان کردند که کاربرد قارچ میکوریزا و پوترسین با افزایش محتوای نسبی آب و شاخص کلروفیل، عملکرد کوانتومی برگ را افزایش بخشید که با بهبود شرایط فتوسنتزی گیاه موجب افزایش هدایت روزنه‌ای گندم در شرایط محدودیت آبی شد (18). همچنین، گزارش شده است که کاربرد پلی‌آمین‌ها نیز از طریق افزایش جذب آب موجب تنظیم حرکات روزنه‌ای می‌شوند (43).

محتوای نسبی آب برگ پرچم: به‌نظر می‌رسد محدودیت آبی با بستن روزنه‌ها، موجب کاهش هدایت روزنه‌ای می‌شود که در ادامه با کاهش پتانسیل آب، محتوای نسبی آب برگ‌ها را کاهش می‌دهد که در نهایت موجب کاهش سرعت فتوسنتز و متعاقبا کاهش رشد گیاه می‌شود (27). بخشی از افزایش محتوای نسبی آب برگ پرچم به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا و پوترسین را می‌توان به افزایش شاخص نیتروژن (جدول 4)، محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی برگ پرچم (جدول 4) نسبت داد که با بهبود فتوسنتز و تولید مواد فتوسنتزی بیشتر ضمن افزایش محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم (جدول 7) و افزایش پتانسیل آب برگ‌ها موجب افزایش محتوای نسبی آب برگ پرچم (جدول 4) می‌شود. در این راستا رضوانی‌پور (1394) اظهار داشت که کاربرد قارچ میکوریزا و پوترسین از طریق گسترش هیف و جذب عناصر غذایی از جمله نیتروژن، فسفر، پتاسیم، منیزیم، کلسیم، آهن و روی موجب افزایش تولید اسمولیت های سازگار و در نهایت افزایش جذب آب شد (12). ظفری و همکاران (2016) نیز بیان کردند که کاربرد قارچ میکوریزا با افزایش جذب نیتروژن و افزایش تولید پرولین و قندهای محلول در گیاهان از طریق تنظیم پتانسیل اسمزی، موجب افزایش محتوای نسبی آب برگ می‌شود (59). همچنین، گزارش شده است که کاربرد پلی‌آمین‌ها نیز با تنظیم حرکات روزنه‌ای موجب افزایش جذب آب می‌شوند (43).

کاربرد ورمی­کمپوست نیز با بهبود جذب نیتروژن و افزایش محتوای کلروفیل، تولید قندهای محلول و پرولین را در گیاه افزایش می‌دهد که تحت چنین شرایطی با افزایش پتانسیل آب برگ‌ها و همچنین کاهش پراکسیداسیون لیپیدی و افزایش پایداری غشاء، محتوای نسبی آب برگ در کلزا افزایش ‌یافت (44). همچنین، گزارش شده است که کاربرد قارچ میکوریزا و ورمی‌کمپوست با افزایش فراهمی عناصر غذایی و بهبود عملکرد کوانتومی و شرایط فتوسنتزی گیاه، موجب افزایش محتوای نسبی آب برگ پرچم تریتکاله می‌شود (21)، که با یافته‌های این پژوهش هم‌خوانی دارد.

هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم: حساسیت بیشتر مرحله آبستنی در مقایسه با مرحله سنبله­دهی به اثرات ناشی از محدودیت آبی موجب شد که اعمال محدودیت آبی در مرحله آبستنی نسبت به مرحله سنبله‌دهی، با تاثیر بیشتر در کاهش جذب عناصر عذایی از جمله نیتروژن و محتوای نسبی آب، موجب اختلال در سیستم فتوسنتزی و افزایش هدایت الکتریکی برگ شود (21). تنش اکسیداتیو القا شده به‌وسیله انواع اکسیژن فعال در چنین شرایطی، به‌دلیل تخریب ساختار غشاء، محتوای مالون‌دی‌آلدهید را افزایش میدهد (6)، که در چنین شرایطی کاربرد پلی‌آمین‌ها، سیالیت غشاء از طریق فعالیت حذفی رادیکال‌های آزاد، غشاهای سلولی را در برابر اکسید شدن حفظ می‌کنند که بدین ترتیب مقاومت غشاها را افزایش می‌دهند و می‌توانند موجب توقف سنتز اتیلن شده و غشاهای سلولی را پایدار نگه دارند (2). در این راستا هاندا و ماتو (2010) بیان کردند که کاربرد پلی‌آمین‌ها از طریق اتصال به قسمت‌های آنیونی درشت مولکول‌ها و غشای پلاسمایی و هم افزایش فعالیت آنتی‌اکسیدانی، موجب تاخیر پیری سلول و کاهش تولید مالون‌دی‌آلدهید در سلول می‌شوند (32). گزارش شده است که کاربرد توام پوترسین و قارچ میکوریزا با افزایش محتوای کلروفیل و عملکرد کوانتومی ضمن افزایش تولید قندهای محلول در برگ، موجب کاهش پراکسیداسیون لیپیدی و هدایت الکتریکی برگ شد (14). بخش دیگری از کاهش هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا را می‌توان به بهبود محتوای پرولین برگ پرچم (جدول 7) نسبت داد. که در این راستا اشرف و همکاران (1396) اظهار داشتند که کاربرد میکوریزا در شرایط محدودیت آبی می‌تواند با افزایش محتوای پرولین، موجب کاهش محتوای مالون‌دی‌آلدهید یا پراکسیداسیون لیپیدی غشاء شود (3). همچنین مامنبی و همکاران (2020) بیان کردند که کاربرد ورمی­کمپوست در شرایط محدودیت آبی با بهبود جذب نیتروژن، فعالیت آنزیم­های آنتی­اکسیدانی و محتوای اسمولیت­های سازگار (محتوای پرولین و قندهای محلول)، موجب افزایش پایداری غشاء و در نهایت کاهش محتوای مالون­دی­آلدهید برگ کلزا شد (44). به‌نظر می‌رسد در این بررسی نیز کاربرد ورمی‌کمپوست با افزایش شاخص نیتروژن و محتوای پرولین و قندهای محلول برگ پرچم (جدول 7) موجب کاهش هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید (جدول 7) برگ پرچم تریتیکاله شد.

محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم: از آنجایی که یکی از مسیرهای تولید پرولین گلوتامات می‌باشد. از این رو با افزایش تولید قندهای محلول، میزان تولید گلوتامات افزایش می‌یابد و سنتز پرولین نیز تشدید می‌شود (14). در شرایط تنش قندهای محلول و پرولین اصلی‌ترین محلول‌های آلی هستند که در تنظیم اسمزی شرکت دارند. انباشت قندهای محلول و پرولین در شرایط محدودیت آبی، علاوه بر نقش فیزیولوژیک مهمی که از نظر تامین انرژی ایفا می‌کند، می‌تواند موجب کاهش پتانسیل اسمزی سلول شده و از طریق تنظیم اسمزی موجب بالاتر نگه‌داشتن میزان آب نسبی در گیاهان شود و به این ترتیب در سازوکار تحمل به محدودیت آبی نقش مهمی داشته باشد (9). بخشی از افزایش محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا را می‌توان به افزایش جذب و بهبود محتوای نیتروژن برگ پرچم (جدول 4) نسبت داد که در این راستا ظفری و همکاران (2016) بیان کردند که کاربرد قارچ میکوریزا با افزایش جذب عناصر غذایی به­خصوص نیتروژن موجب افزایش تولید پرولین و قندهای محلول در گیاهان می‌شود (59). محلول‌پاشی پوترسین موجب می‌شود نیاز گیاه به پلی‌آمین‌های درونی کاهش پیدار کرده و در نتیجه‌ی کاتابولیسم پلی‌آمین‌های درونی، میزان پرولین گیاه افزایش پیدار کند (31). در این راستا رضوانی‌پور (1394) اظهار داشت که کاربرد قارچ میکوریزا و پوترسین از طریق گسترش هیف و جذب عناصر غذایی از جمله نیتروژن، فسفر، پتاسیم، منیزیم، کلسیم، آهن و روی موجب افزایش محتوای کلروفیل، تولید قند و بهبود جذب آب شد (12). بخش دیگری از افزایش محتوای قندهای محلول و پرولین به‌واسطه کاربرد ورمی‌کمپوست را می‌توان به افزایش شاخص نیتروژن و محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی برگ پرچم (جدول 4) نسبت داد، که در این راستا مامنبی و همکاران (2020) بیان کردند که کاربرد ورمی­کمپوست در شرایط محدودیت آبی با بهبود جذب نیتروژن و افزایش محتوای کلروفیل موجب افزایش تولید قندهای محلول و پرولین در برگ کلزا شد (44). وانگ و همکاران (2011) نیز اظهار داشتند که کاربرد کودهای آلی از جمله ورمی‌کمپوست در شرایط محدودیت آبی، با افزایش اسید آمینه­های ضروری به­ویژه گلوتامات و آرژینین که از پیش­سازهای تولید پرولین می­باشد موجب افزایش تجمع پرولین و در نهایت افزایش تحمل گیاه در مواجهه با تنش­های محیطی مثل شوری و خشکی می­شود (56).

درصد پروتئین برگ پرچم: یکی از بارزترین اثرات محدودیت آبی تاثیر آن در متابولیسم پروتئین است، از آنجایی­که نیتروژن در گیاهان به­صورت پروتئین تکامل می­یابد، به­نظر ﻣﻲرﺳﺪ ﺑﺎ ﺗﻮﺟﻪ به تاثیر میکوریزا در اﻓﺰاﻳﺶ ﺟﺬب ﻋﻨﺎﺻﺮ به­‌ویژه ﻧﻴﺘﺮوژن و نقش ورمی­کمپوست مورد استفاده در اﻓﺰاﻳﺶ دسترسی به ﻧﻴﺘﺮوژن (جدول 2) ﻣﻮرد ﻧﻴﺎز ﺑﺮای ﺗﻮﻟﻴﺪ اﺳﻴﺪﻫﺎی آﻣﻴﻨﻪ و ﻛﺎﻫﺶ ﺗﺠﺰﻳﻪ پروتئین­ها (17)، از دلایل دیگر افزایش محتوای پروتئین تحت چنین شرایطی باشد. در این راستا مایسین و همکاران (2010) افزایش پروتئین در کاربرد ورمی­کمپوست را، به تامین مقادیر قابل توجهی از عناصر پیش­نیاز برای تولید پروتئین از ورمی­کمپوست نسبت دادند (46). ظفری و همکاران (2016) نیز افزایش محتوای پروتئین برگ به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا را به بهبود جذب نیتروژن و افزایش محتوای نسبی آب برگ نسبت دادند (59). همچنین، ساجدی و همکاران (1389) بیان کردند که قارچ میکوریزا در شرایط محدودیت آبی به‌دلیل بهبود روابط آبی گیاه و افزایش فشار تورگر، و همچنین با افزایش سطح جذب ریشه از طریق انتشار میسلیوم‌های خارجی به منافذ ریز خاک که امکان ورود ریشه‌های موئین برای جذب آب وجود ندارد، آب و عناصر غذایی را جذب و به گیاه منتقل می‌کند، که در نهایت با افزایش میزان نیتروژن، موجب بهبود محتوای پروتئین می‌شود (13). پلی‌آمین‌ها به‌دلیل خاصیت چسبندگی به RNA، DNA و پروتئین‌ها، و همچنین از طریق باز داشتن فعالیت RNAse و پروتئاز، از تخریب پروتئین‌ها جلوگیری می‌کند (2). امرائی تبار و همکاران (1395) اظهار داشتند که محلول‌پاشی پوترسین با نابودی گونه‌های فعال اکسیژن، از تخریب پروتئین‌ها به‌وسیله رادیکال‌های آزاد اکسیژن جلوگیری کرده و موجب افزایش سنتز پروتئین‌ها در گیاه می‌شود (5). سیدشریفی و همکاران (1399) نیز افزایش درصد پروتئین برگ به‌واسطه کاربرد توام قارچ میکوریزا و پوترسین را به افزایش محتوای کلروفیل و عملکرد کوانتومی برگ نسبت دادند (14).

عملکرد دانه: اصولا میزان فلورسانس زمانی که پذیرنده الکترون در حالت احیا باشد، زیاد بوده و به این دلیل میزان فلورسانس متغیر (Fv) نیز در این شرایط زیاد می‌گردد، ولی موقعی که کینون در حالت اکسیداسیون باشد میزان فلورسانس کلروفیل کم شده و در نتیجه میزان فلورسانس متغیر کاهش پیدا می‌کند (48). کاهش عملکرد دانه در شرایط محدودیت آبی می‌تواند ناشی از ممانعت از فتواکسیداسیون فتوسیستم II و اختلال در انتقال الکترون به فتوسیستم I باشد که در چنین شرایطی فلورسانس حداکثر، فلورسانس متغیر و عملکرد کوانتومی کاهش می‌یابد که در ادامه با تخریب و کاهش رنگدانه‌های فتوسنتزی موجب کاهش عملکرد دانه می‌شود (48)، که با یافته‌های این پژوهش هم‌خوانی دارد. همچنین، به‌نظر می‌رسد قطع آبیاری در مرحله آبستنی نسبت به مرحله سنبله‌دهی به‌دلیل حساسیت بیشتر مرحله آبستنی به کمبود آب، از طریق محدودیت بیشتر در جذب عناصر عذایی از جمله نیتروژن و کاهش محتوای نسبی آب گیاه، و با ایجاد اختلال در سیستم فتوسنتزی، کاهش کلروفیل و عملکرد کوانتومی موجب کاهش عملکرد دانه تریتیکاله می‌شود (21). بخش دیگری از افزایش عملکرد دانه به‌واسطه کاربرد ورمی‌کمپوست را می‌توان به فراهمی عناصر غذایی (جدول 2) و بهبود محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی و آنتوسیانین (جدول 4 و 5) نسب داد، در این راستا تئونیسن و همکاران (2010) گزارش کردند که درصد بالای هیومیک اسید موجود در ورمی‌کمپوست و همچنین، افزایش محتوای عناصر غذایی از جمله نیتروژن، فسفر، پتاسیم، کلسیم، منیزیم، گوگرد، آهن، منگنز، روی و مس، ضمن افزایش محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی و آنتوسیانین موجب بهبود فتوسنتز و در نهایت عملکرد گیاه شد (54). بخش دیگری از بهبود عملکرد دانه در شرایط محدودیت آبی به‌واسطه کاربرد قارچ میکوریزا را می‌توان به افزایش جذب نیتروژن (جدول 4) گیاه نسبت داد که در بررسی ساجدی و همکاران (1389) نیز کاربرد قارچ میکوریزا در شرایط محدودیت آبی به‌دلیل بهبود روابط آبی گیاه و افزایش فشار تورگر و همچنین با افزایش سطح جذب ریشه از طریق انتشار میسلیوم‌های خارجی خود به منافذ ریز خاک که امکان ورود ریشه‌های موئین برای جذب آب وجود ندارد، آب و عناصر غذایی را جذب و به گیاه منتقل می‌کند، که در نهایت با افزایش محتوای نیتروژن و بهبود رنگدانه های فتوسنتزی، به تدوام فرآیند فتوسنتز و مادهسازی و افزایش عملکرد دانه کمک می‌کند (13). همچنین، آقایی و همکاران (1401) بیان کردند که کاربرد میکوریزا در شرایط تنش از طریق کاهش هدایت الکتریکی برگ و بهبود محتوای نسبی آب، شاخص نیتروژن و شاخص کلروفل موجب افزایش عملکرد دانه گندم شد (7)، که با یافته‌های این پژوهش هم‌خوانی دارد. گزارش شده است که کاربرد ورمی­کمپوست در شرایط محدودیت آبی، محتوای مالون­دی­آلدهید را از طریق بهبود جذب فسفر و نیتروژن و افزایش تولید قندهای محلول و پرولین، کاهش می‌دهد که ضمن بهبود محتوای کلروفیل برگ و پایداری غشاء موجب افزایش عملکرد دانه می‌شود (44). نظری و همکاران (1400) نیز افزایش عملکرد دانه در شرایط محدودیت آبی به‌واسطه کاربرد میکوریزا و ورمی‌کمپوست را به افزایش محتوای نیتروژن و کلروفیل و همچنین بهبود عملکرد کوانتومی نسبت دادند (21). همچنین با توجه به وجود نیتروژن در ساختار پلی‌آمین‌ها (10) و تاثیر این ترکیبات در بهبود شاخص‌های فلورسانس کلروفیل (35) زمینه را برای افزایش سنتز رنگدانه‌های فتوسنتزی و آنتوسیانین فراهم می‌شود (29) که در نهایت موجب افزایش عملکرد دانه می‌شود. سیدشریفی و همکاران (1399) اظهار داشتند که کاربرد توام قارچ میکوریزا و پوترسین از طریق بهبود محتوای اسمولیت‌های سازگار (محتوای پرولین و قندهای محلول) ضمن کاهش پراکسیداسیون لیپیدی و هدایت الکتریکی برگ، موجب افزایش محتوای کلروفیل شد که در چنین شرایطی با افزایش عملکرد کوانتومی، موجب افزایش تولید گیاه در شرایط محدودیت آبی شد (14). در این بررسی نیز به‌نظر می‌رسد محلول‌پاشی پوترسین از طریق بهبود محتوای نیتروژن (جدول 4)، عملکرد کوانتومی برگ پرچم (جدول 4)، موجب بهبود محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی و آنتوسیانین و در نهایت عملکرد دانه (جدول 4، 5 و 7) شد.

کاربرد توام ورمی‌کمپوست با میکوریزا و محلول‌پاشی پوترسین در شرایط آبیاری کامل موجب بهبود شاخص نیتروژن و عملکرد کوانتومی و کاهش هدایت الکتریکی و محتوای مالون‌دی‌آلدهید برگ پرچم نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی شد. کاربرد توام ورمی‌کمپوست، میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی نیز از بیش‌ترین محتوای قندهای محلول و پرولین برگ پرچم برخوردار بود. همچنین کاربرد ورمی‌کمپوست و میکوریزا و محلول‌پاشی 8/0 میلی‌مولار پوترسین در شرایط آبیاری کامل از بیش‌ترین محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، هدایت روزنه‌ای و محتوای نسبی آب برخوردار بود، که با افزایش 04/59 درصدی میزان پروتئین، موجب افزایش 6/39 درصدی عملکرد دانه ترتیکاله نسبت به شرایط عدم کاربرد کودهای زیستی و پوترسین تحت شرایط قطع آبیاری در مرحله آبستنی شد. به‌نظر می‌رسد کاربرد کودهای زیستی و پوترسین در شرایط محدودیت آبی می‌تواند با بهبود شاخص‌های فیزیولوژیک و رنگدانه‌های فتوسنتزی، عملکرد دانه تریتیکاله را حتی در شرایط محدودیت آبی افزایش دهد.

سپاسگزاری

مقاله مستخرج از بخشی از پایان‌نامه دکتری نویسنده اول می‌باشد. نویسندگان مراتب سپاس و قدرشناسی خود را از یکایک همکاران ارجمند در دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه محقق اردبیلی که همکاری‌های ارزشمندی را در تمامی مراحل اجرای طرح معطوف داشته‌اند اعلام می‌دارند.

1-      ابطحی، س. م و باقرزاده، ک. (1393). بررسی مقایسه‌ای تولید علوفه و دانه چاودار، جو، تریتیکاله و ماشک در شرایط دیم. مجله زراعت دیم ایران، 2(2): 105-114.
2-      اسماعیل‌خان زندی، م و دانائی، ا. (1393). تاثیر محلول‌پاشی پیش از برداشت پوترسین، اسپرمین و اسپرمیدین بر برخی صفات، آنزیمی و ماندگاری گل رز رقم black baccarat روز بوته. مجله زیست‌شناسی سلولی مولکولی گیاهی، 9(1-2): 11-21.
3-      اشرف، ح؛ زکی‌زاده، ه؛ احتشامی، س. م و بیگلوئی، م. ح. (1396). ارزیابی همزیستی سه گونه قارچ میکوریزا بر ویژگی‌های بیوشیمیایی چمن‌های اگروپیرون (Agropyron elongatum) و پو آی چندساله (Poa pratensis) تحت تنش خشکی. پژوهش‌های تولید گیاهی، 24(3): 27-46.
4-      افتاده فدافن، ع؛ امینی فرد، م. ح؛ بهدانی، م. ع و مرادی­نژاد، ف. (1396). اثر سطوح مختلف نیتروکسین و ورمی‌کمپوست بر عملکرد و رنگیزه­های فتوسنتزی زعفران (Crocus sativus L.). مجله پژوهش­های زعفران، 5(2): 163-179.
5-      امرایی تبار، س؛ ارشادی، ا و رباطی، ت. (1395). تاثیر پوترسین و اسپرمین بر تحمل به خشکی بادام و هلو. مجله به‌زراعی کشاورزی، 18(1): 203-18.
6-      امیری‌نژاد، م؛ اکبری، غ. ع؛ باقی‌زاده، ا؛ اله‌دادی، ا؛ شهبازی، م و نعیمی، م. (1394). اثر تنش خشکی و محلول‌پاشی آهن و روی بر برخی صفات بیوشیمیایی گیاه دارویی زیره سبز. به‌زراعی کشاورزی، 17(4): 855-866.
7-      آقایی، ف؛ سیدشریفی، ر و نریمانی، ح. (1401). تاثیر یونیکونازول و کودهای بیولوژیک بر عملکرد، شاخص‌های فلورسانس کلروفیل و برخی صفات فیزیولوژیک گندم تحت شرایط شوری خاک. پژوهش‌های گیاهی، 35(1): 112-124.
8-      باغبانی آرانی، ا؛ مدرس ثانوی، س. ع. م؛ مشهدی اکبر بوجار، م؛ اداوی، ظ و دهقان­زاده جزی، ح. (1398). اثر تنش کم‌آبی بر شاخص­های فلورسانس کلروفیل، رنگدانه­های فتوسنتزی، تریگونلین و عملکرد دانه شنبلیله در واکنش به زئولیت و نیتروژن. مجله یافته­های نوین در علوم زیستی، 6(2): 229-240.
9-      برزگر، ز؛ قاسمیان، ع؛ رئیسی ساداتی، س. ی و اسدی، ا. (1399). بررسی اثرات نانوکلات پتاسیم بر میزان قند محلول، پرولین، پروتئین کل و فعالیت برخی آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی در گندم (Triticum aestivum L.) تحت تنش کم‌آبی. فرآیند و کارکرد گیاهی، 9(36): 49-62.
10-   الجازع، ح. م. (1396). بررسی اثر محلول‌پاشی پلی‌آمین (پوترسین) و عصاره مخمر بر رشد و عملکرد و درصد اسانس گیاه نعناع فلفلی (Mentha piperita L.) تحت شرایط تنش شوری. پایان‌نامه کارشناسی ارشد. دانشکئه کشاورزی. دانشگاه فردوسی مشهد.
11-   خیری‌زاده آروق، ی؛ سیدشریفی، ر و خلیل‌زاده، ر. (1397). کاهش اثرات تنش شوری در تریتیکاله (Triticosecale ×) با کاربرد کودهای زیستی و روی. پژوهش‌های گیاهی، 31(4): 801-821.
12-   رضوانی‌پور، ش. (1394). تاثیر پلی‌آمین‌ها و همزیستی میکوریزائی بر رشد و گلدهی فریزیا (Freesia × hybrid). رساله دکتری. گروه علوم باغبانی. دانشگاه گیلان.
13-   ساجدی، ن؛ اردکانی، م، ساجدی، ع و بهرامی، ع. (1389). جذب برخی عناصر غذایی تحت تاثیر میکوریزا، سطوح مختلف روی و تنش خشکی در ذرت. مجله پژوهش‌های زراعی ایران، 8(5): 784-791.
14-   سیدشریفی، ر؛ سیدشریفی، ر و نریمانی، ح. (1399). تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر بیوماس، گره‌زایی و برخی صفات مورفولوژیکی و بیوشیمیایی ماشک گل خوشه‌ای تحت شرایط دیم. به‌زراعی کشاورزی، 22(4): 513-529.
15-   صالحی، ف؛ مرادی قهدریجانی، م؛ میرابوالفتحی، م و اصغرزاده، ن. ع. (1387). تاثیر کلونیزیاسون قارچ‌های میکوریزی (VA) و سطوح مختلف فسفر بر جذب فسفر، پتاسیم، کلسیم، منیزیم و روی و صفات رویشی نهال پسته. پژوهش و سازندگی در زراعت و باغبانی، 78: 48-56.
16-   عبادی، ن؛ سیدشریفی، ر و صدقی، م. (1399). اثر آبیاری تکمیلی و کودهای زیستی بر محتوای مالون‌دی‌آلدیی، آنتوسیانین و شاخص‌های فلورسانس کلروفیل جو دیم. مجله فیزیولوژی گیاهان زراعی، 13(49): 45-69.
17-   علیخانی، س و محمودی زرندی، م. (1398). اثر مایه‌زنی توام اندومیکوریز و باکتری­های ریزوبیوم ملیلوتی و سودوموناس آئروژینوزا بر گیاه یونجه (Medicago sativa) در شرایط تنش آبی. مجله پژوهش­های گیاهی، 32(1): 1398.
18-   محسنی محمدجانلو، ع؛ سیدشریفی، ر و خماری، س. (1401). تاثیر کودهای زیستی و پوترسین بر عملکرد دانه و برخی شاخص‌های فیزیولوژیکی گندم در سطوح مختلف آبیاری. به‌زراعی کشاورزی، 24(1): 67-83.
19-   محمدی کله­سرلو، س؛ سیدشریفی، ر؛ صدقی، م؛ نریمانی، ح و خلیل­زاده، ر. (1400). اثر شوری، ورمی­کمپوست، هیومیک اسید و تلقیح بذر با فلاوباکتریوم بر پر شدن دانه چاندم. مجله دانش کشاورزی و تولید پایدار، 31(2): 250-269.
20-   نریمانی، ح؛ سیدشریفی، ر، خلیل‌زاده، ر و امین‌زاده، غ. 1397. تاثیر نانواکسید آهن در عملکرد، شاخص‌های فلورسانس کلروفیل و برخی صفات فیزیولوژیک گندم (Triticum aestivum L.) در شرایط دیم و آبیاری تکمیلی. مجله زیست‌شناسی گیاهی ایران، 10(37): 21-40.
21-   نظری، ژ؛ سیدشریفی، ر و نریمانی، ح. (1400). اثر مایکوریزا، ورمی‌کمپوست و نانوسیلیکون بر صفات زراعی و فیزیولوژیکی تریتیکاله تحت شدت‌های مختلف تنش خشکی. مجله تولید گیاهان زراعی، 14(4): 21-46.
22-   ولی‌نژاد، ز؛ قلی‌زاده، ع؛ نعیمی، م؛ غلامعلی‌پور علمداری، ا و زارعی، م. (1398). تاثیر ورمی‌کمپوست و قارچ میکوریزا بر خصوصیات کمی و کیفی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana Bertoni). مجله تحقیقات گیاهان دارویی و معطر، 35(3): 484-500.
23-   یقینی، ف؛ سیدشریفی، ر، خماری، س و قاسمی، م. (1399). تاثیر آبیاری تکمیلی و تلقیح بذر با کودهای زیستی بر عملکرد و برخی صفات فیزیولوژیک گندم دیم رقم رصد. مجله فرآیند و کارکرد گیاهی، 9(39): 147-163.
 
24-   Arnon AN (1967). Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal, 23: 112-121.
25-   Bates LS, Walderen RD, Taere ID (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant Soil, 39: 205-207.
26-   Begum N, Qin C, Ahanger MA, Raza S, Khan MI, Ashraf M, Ahmed N, Zhang L (2019). Role of Arbuscular mycorrhizal fungi in plant growth regulation: Implications in abiotic stress tolerance. Frontiers in Plant Science, 10: 1-15.
27-   Bota J, Flexas J, Medrano H (2004). Is photosynthesis limited by decreased Rubisco activity and RuBP content under progressive water stress?. Journal of New Phytolgist, 162(3): 671-681.
28-   Bradford MM (1976). A rapid and sensitive for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72: 248.
29-   Danaee E, Abdossi V (2018). Effect of different concentrations and application methods of polyamines (Putrescine, Spermine, Spermidine) on some morphological, physiological, and enzymatic characteristics and vase life of Rosa hybrida cv. ‘Dolce Vita’ cut flower. Journal of Ornamental Plants, 8(3): 171-182.
30-   Dubios M, Gilles KA, Hamilton JK, Roberts PA, Smith F (1956). Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Justus Liebigs Annalen der Chemie, 28: 350-356.
31-   Farooq M, Basra SMA, Wahid A, Cheema ZA, Cheema MA, Khaliq A (2008). Physiological role of exogenously applied glycinebetaine in improving drought tolerance of fine grain aromatic rice (Oryza sativa L.). Journal of Agronomy and Crop Science, 194(5): 325 -333.
32-   Handa AK, Mattoo, AK (2010). Differential and functional interactions emphasize the multiple roles of polyamines in plants. Plant Physiology and Biochemistry, 487: 540-546.
33-   Hasanuzzaman M, Alhaithloul HAS, Parvin K, Bhuyan MB, Tanveer M, Mohsin SM, Nahar K, Soliman MH, Mahmud JA, Fujita M (2019). Polyamine action under metal/metalloid stress: regulation of biosynthesis, metabolism, and molecular interactions. International Journal of Molecular Sciences, 20: 3215.
34-   Hashem A, Kumar A, Al-Dbass AM, Alqarawi AA, Al-Arjani ABF, Singh G, Farooq M, Abd-Allah EF (2019). Arbuscular mycorrhizal fungi and biochar improves drought tolerance in chickpea. Saudi Journal of Biological Sciences, 26: 614-624.
35-   Islam MJ, Uddin MJ, Hossain MA, Henry R, Begum MK, Sohel MAT, Mou MA, Ahn J, Cheong EJ, Lim YS (2022). Exogenous putrescine attenuates the negative impact of drought stress by modulating physiobiochemical traits and gene expression in sugar beet (Beta vulgaris L.). PLOS ONE, 17(1): e0262099.
36-   Islam MR, Rahman SME, Rahman MM, Oh DH, Ra CS (2010). The effects of biogas slurry on the production and quality of maize fodder. Turkish Journal of Agricultural and Forestry, 34: 91-99.
37-   Jabeen N, Ahmad R (2016). Growth response and nitrogen metabolism of sunflower (Helianthus annuus L.) to vermicompost and biogas slurry under salinity stress. Journal of Plant Nutrition, 40(1): 104-114.
38-   Khalvandi M, Amerian M, Pirdashti H, Keramati S (2021). Does co-inoculation of mycorrhiza and Piriformospora indica fungi enhance the efficiency of chlorophyll fluorescence and essential oil composition in peppermint under irrigation with saline water from the Caspian Sea? PLOS ONE, 16(7): e0254076.
39-   Khan AS, Singh Z, Abbasi NA (2007). Prestorage putrescine application suppresses ethylene biosynthesis and retards fruit softening during low temperature storage in ‘Angelino’ plum. Postharvest Biology and Technology, 46(1): 36-46.
40-   Kheirizadeh Arough Y, Seyed Sharifi R, Sedghi M, Barmaki M (2016). Effect of Zinc and Bio Fertilizers on Antioxidant Enzymes Activity, Chlorophyll Content, Soluble Sugars and Proline in Triticale under Salinity Condition. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 44(1): 116-124.
41-   Kostopoulou P, Barbayiannis N, Basile N (2010). Water relations of yellow sweet clover under the synergy of drought and selenium addition. Plant Soil, 330(1-2): 65-71.
42-   Lakhdar A, Rabhi M, Ghnaya T, Montemurro F, Jedidi N, Abdelly C (2009). Effectiveness of compost use in salt-affected soil. Journal of Hazardous Materials, 171: 29-37.
43-   Liu JH, Honda C, Morigiguchi, T (2006). Involvement of polyamine in floral and fruit development. Japan Agricultural Research Quarterly, 40: 51-58.
44-   Mamnabi SS, Nasrollahzadeh K, Ghassemi-Golezani, Raei Y (2020). Improving yield-related physiological characteristics of spring rapeseed by integrated fertilizer management under water deficit conditions. Saudi Journal of Biology Science, 27(3): 797-804.
45-   Mita S, Murano N, Akaike M, Nakamura K (1997). Mutants of Arabidopsis thaliana with pleiotropic effects on the expression of the gene for beta-amylase and on the accumulation of anthocyanin those are inducible by sugars. Plant Journal, 11: 841-851.
46-   Mycin TR, Lenin M, Selvakumar G, Thangadurai R (2010). Growth and nutrient content variation of groundnut Arachis hypogaea L. under vermicompost application. Journal of Experimental Science, 1(8): 12-16.
47-   Nikbakhtai M, Babalar M, Walp Luo I, Etemadi N (2008). Effect of commercial humic acid on plant growth, nutrients uptake and postharvest life of gerbera. Journal of Plant Nutrition, 31: 2155- 2167.
48-   Paknejad F, Nasri M, Tohidi Moghadam HR, Zahedi H, Jami Alahmad M (2007). Effects of drought stress on chlorophyll fluorescence parameters chlorophyll content and grain yield of wheat cultivars. Journal of Biological Sciences, 7(6): 841-847.
49-   Qu Y, Jiang L, Wuyun T, Mu S, Xie F, Chen Y, Zhang L (2020). Effects of exogenous putrescine on delaying Senescence of cut foliage of Nephrolepis cordifolia. Frontiers in Plant Science, 11: 566824.
50-   Rahbarian R, Khavari-Nejad R, Ganjeali A, Bagheri A, Najafi F (2011). Drought stress effects on photosynthesis, chlorophyll fluorescence and water relations in tolerant and susceptible chickpea (Cicer arietinum L.) genotyps. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 53: 47-56.
51-   Scharf PC, Brouder SM, Hoeft RG (2006). Chlorophyll meter reading can predict nitrogen need and yield response of corn in the north-central USA. Agronomy Journal, 98: 655-665.
52-   Silva TR, Cazetta JO, Carlin SD, Telles BR (2017). Drought-induced alterations in the uptake of nitrogen, phosphorus and potassium, and the relation with drought tolerance in sugar cane. Ciência e Agrotecnologia, 41: 117-127.
53-   Stewart RC, Beweley JD (1980). Lipid peroxidation associated with accelerated aging of soybean axes. Plant Physiology, 65: 245-248.
54-   Theunissen J, Ndakidemi PA, Laubscher CP (2010). Potential of vermicompost produced from plant west on the growth and nutrient status in vegetable production International. Physical Sciences, 5: 964-1973.
55-   Vicente AR, Repice B, Martiinez GA, Chaves AR, Civello PM, Sozzi GO (2004). Maintenance of fresh boysenberry fruit quality with UV-C light and heat treatments combined with low storage temperature. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 79(5): 246-251.
56-   Wang Y, Ma F, Li M, Liang D, Zou J (2011). Physiological responses of kiwifruit plants to exogenous ABA under drought conditions. Plant Growth Regulation, 64: 63-74.
57-   Younas M, Zou H, Laraib T, Abbas W, Akhtar MW, Aslam MN, Amrao L, Hayat S, Abdul Hamid T, Hameed A, Kachelo GA, Elseehy M, El-Shehawi AM, Zuan AT, Li Y, Arif M (2021). The influence of vermicomposting on photosynthetic activity and productivity of maize (Zea mays L.) crop under semi-arid climate. PLOS ONE, 16(8): e0256450.
58-   Yousefi F, Jabbarzadeh Z, Amiri J, Rasouli-Sadaghiani MH, Shaygan A (2021). Foliar application of polyamines improves some morphological and physiological characteristics of rose. Folia Horticulture, 33(1): 1-10.
59-   Zafari M, Ebadi A, Jahanbakhsh Gode Kahriz S (2016). Synergistic effects of Glomus mosseae and Sinorhizobium meliloti on compatibility metabolites of alfalfa. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 26(3): 43-56.
60-   Zahoor A., Ejaz AW, Sajjad A, Shazia A, Tanveer A, Wajid M, Osama BA, Terence T, Maryke L, Muhammad R (2018). Physiological responses of wheat to drought stress and its mitigation approaches. Acta Physiologiae Plantarum, 40(80): 1-13
دوره 37، شماره 4
زمستان 1403
صفحه 372-388

  • تاریخ دریافت 26 خرداد 1401
  • تاریخ بازنگری 11 مهر 1401
  • تاریخ پذیرش 29 مهر 1401