The survey of ontogeny of generative organs and formation of flower and measurement of carbohydrate content and its enzymatic activity in Ziziphus jujuba Mill.

Document Type : Research Paper

Authors

Azad university North Branch Tehran

2818

Abstract

In order to study the anatomy and ontogeny of generative meristem in Ziziphus jujuba generative meristem and young buds(tiny buds to mature buds), in different developmental stages, were removed, fixded in FAA embedded in paraffin and sliced at 7-10 µm. staining was carried out with Hematoylin – Eosin. The generative meristems and young buds were studied with light microscope after staining. Results showed that vegetative meristems developed to generative meristem and different components of flower were formed. Anther primordium and carpel primordium and petals were formed from sporangiare meristem.sepals were formed from initial ring.
As well as carbohydrate contents and antioxidants enzymes activities in different seasonal conditions (spring and summer 1390) in two cities (Behshahr, Mazandaran ; Galikesh, Golestan) measured. As seasonal changes, proteins levels and peroxydase activity increased in two cities, while catalase and ascorbate peroxydase activities reduced. Soluble and insoluble carbohydrates levels don’t have any significant difference. Proteins levels and peroxydase activity were more in Behshar and catalase activity in Galikesh respectively.

Keywords

بررسی تکوین مریستم زایشی، تشکیل گل، سنجش میزان کربوهیدرات و فعالیت آنزیمی گیاه عناب (Zizyphus jujuba Mill.) 

سایه جعفری*، فریبا شریف‌نیا، مریم پیوندی و  فاطمه نیکنام

تهران، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، دانشکده علوم پایه، گروه زیست‌شناسی

تاریخ دریافت: 3/3/91                 تاریخ پذیرش: 29/10/92

چکیده

به‌منظور بررسی تشریحی و تکوینی مریستم زایشی گیاه عناب گونه­ Ziziphus jujuba از مریستم زایشی و غنچه‌ها در مراحل مختلف برداشت شد و در FAA (فرمالدئید، اتانول، اسید استیک) تثبیت و پس از قرار دادن در پارافین، برش‌هایی به ضخامت 10-7 میکرون تهیه شد. سپس رنگ‌آمیزی نمونه با هماتوکسیلین– ائوزین انجام شد. نتایج نشان داد که از تکوین مریستم زایشی، اجزاء مختلف گل تشکیل می‌شود. در نتیجه فعالیت مریستم بارده پریموردیوم پرچم‌ها، برچه و گلبرگ‌ها به وجود می‌آیند و حلقه بنیادی منشأ تشکیل کاسبرگهاست. همچنین به‌منظور پی‌بردن به چگونگی سازگار شدن گیاه با تغییر شرایط آب و هوایی، سنجش پروتئین، آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی و کربوهیدرات‌ها از برگ گیاه در بهار و تابستان 1390 در استان‌های مازندران و گلستان استفاده شد. با تغییر فصل سطح پروتئین و میزان فعالیت آنزیم پراکسیداز گیاه در هر دو شهر افزایش و کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز کاهش یافت. میزان کربوهیدرات‌ها در دو فصل از نظر آماری تفاوت معنی‌داری را نشان ندادند. البته سطح پروتئین و میزان فعالیت آنزیم پراکسیداز گیاه در مازندران و کاتالاز در گلستان بیشتر بود.

واژه‌های کلیدی: Ziziphus jujuba، آنزیم، کربوهیدرات، مریستم رویشی، مریستم زایشی

* نویسنده مسئول، تلفن: 09122789281 ، پست الکترونیکی:  jafarisayeh@yahoo.com 

مقدمه

 

گیاه عنّاب با نام علمی Zizyphus jujuba گیاهی درختی از تیره عنّاب (Rhamnaceae) است که در ایران به حالت خودرو، نیمه خودرو و پرورش یافته دیده می‌شود (8). در این پژوهش از واریته‌ خاردار  Z.jujuba lam. Var. spinosus Bge استفاده شده است. برگ‌هایی بی‌کرک و گلهایی با دمگل کوتاه (1 تا 5 میلی‌متر) به رنگ زرد و با گل‌آذین گرزن در کنار برگ‌ها دارد، دارای 5 کاسبرگ پهن، ۵ گلبرگ ریز و ۵ پرچم است (12). میوه‌ عنّاب به شکل بیضوی به صورت شفت قهوه‌ای رنگ، به بزرگی یک زیتون و دارای خواص دارویی بسیاری است (13 و 5 ). میوه عنّاب به‌عنوان داروی لعاب‌دار و نرم‌کننده سینه، آرام‌کننده اعصاب، مقوّی معده، خواب‌آور، ملیّن، ضدّ‌سرفه و مدر استفاده می‌شود و برای تصفیه خون و کمک به هاضمه تجویز می‌شود. جوشانده ریشه درخت عنّاب را برای کاهش تب بکار می‌برند و گرد ریشه خشک آن را برای التیام روی زخم‌ها و جراحت‌های کهنه می‌ریزند. پوست درخت عنّاب دارویی برای قطع اسهال است. اگر کمی برگ تازه در کف دست‌ها له شود با آب تولید کف می‌کند و به جای صابون می‌توان از آن استفاده کرد (18،23).

شرایط تنش، باعث تولید انواع اکسیژن فعال می‌شود. آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان ازجمله کاتالاز، پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز به‌عنوان سریعترین واحدهای مقابله کننده در برابر حمله اکسیژن‌های  فعال به‌شمار می‌روند.

با بررسی میزان تغییرات آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی و کربوهیدرات‌های گیاه در شرایط مختلف می‌توان به چگونگی سازگاری گیاه با شرایط محیطی پی‌برد؛ زیرا آنزیم‌ها با تغییرات کمی و کیفی خود مهمترین و حساس‌ترین ترکیبات موجود در گیاهان هستند که تغییرات فیزیولوژیکی و تنش‌های مختلف را منعکس می‌کنند (7).

مواد و روشها

نمونه‌های مورد بررسی از شهرستان بهشهر در مازندران و گالیکش در گلستان در ماه‌های خرداد و شهریور 1390 جمع‌آوری شدند.

ویژگی شهرهای مورد بررسی: شهر بهشهر در استان مازندران با طول جغرافیایی 55 و عرض جغرافیایی 37 و ارتفاع 14- متر از سطح دریاهای آزاد است. شهر گالیکش در استان گلستان با طول جغرافیایی 53 و عرض جغرافیایی 36 و ارتفاع 155 متر از سطح دریاهای آزاد است. وضعیت بارندگی و تغییرات دمایی این دو شهر در ماه‌های نمونه‌برداری در جدول 1 نشان داده شده است (22).

جدول 1- مقایسه شرایط آب و هوای شهرهای محل نمونه‌برداری

زمان و مکان

عامل مورد بررسی

خرداد گالیکش

شهریور گالیکش

خرداد بهشهر

شهریور بهشهر

حداکثر دما

36

5/39

32

34

میانگین دمای متوسط

5/24

5/25

8/22

2/24

میانگین درصد بارش

4/16

4/1

93

3/40

تعداد روزهای دارای بارش

9

5

9

7

به‌منظور بررسی ساختار تشریحی مریستم رویشی و زایشی، نمونه‌ها در فیکساتور F.A.A (فرمالدئید 37%، اتانول 96% و استیک اسید به نسبت 2، 17، 1) به مدت 24 ساعت قرار گرفتند. سپس مراحل شستشو و رنگ‌آمیزی با هماتوکسیلین- ائوزین و تهیه عکس طی شد (9). برای استخراج عصاره پروتئینی از 5/0 گرم برگ تر گیاه و بافر تریس– گلایسین استفاده شد. به‌منظور سنجش پروتئین از روش برادفورد (1976) استفاده شد (17). فعالیت آنزیم کاتالاز با استفاده از روش پری‌ارا (2002) (21) و فعالیت آنزیم پراکسیداز با روش کوری (1989) سنجیده شد (20). سنجش فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز با روش آسادا (1994) انجام گردید (16). برای سنجش قند محلول و نامحلول با استفاده از برگ‌های خشک گیاه، از روش فنل– سولفوریک اسید کوچر(1978)  استفاده شد (19). تجزیه و تحلیل داده‌ها، با استفاده از برنامه ANOVA و توسط نرم‌افزار  SPSS (version 16) انجام شد.

نتایج

مریستم رأس ساقه: مریستم انتهایی ساقه در عناب از نوع مریستم‌های تیپ برآمده یا گنبدی شکل است. ناحیه انتهایی، شامل دو ردیف تونیکا (T) و منطقه کورپوس (C) است. در اثر تقسیمات مماسی زیر تونیکا و شعاعی تونیکا محل تشکیل برگ جدید متورم می‌شود (I.F). ناحیه مریستم مغز (M.M) در زیر ناحیه انتهایی قرار دارد. سیستم واکوئلی در این منطقه گسترش زیادی دارد که نشان‌دهنده این است که این ناحیه تقریباً تخصصی است. رنگ‌پذیری کم، نشانگر فعالیت کم میتوزی این ناحیه است. اطراف مریستم رأسی به وسیله طرح‌های اولیه برگی (E.F) احاطه شده است و در بخش‌هایی نوارهای پروکامبیومی (Pr) نیز قابل رؤیت هستند (شکل1A ).

مریستم زایشی: پس از رسیدن گیاه به مرحله‌ بلوغ، مریستم رأس ساقه با تحولاتی که می‌گذراند به مریستم زایشی تبدیل می‌شود. از مقایسه مریستم رویشی و مریستم زایشی (شکل 1  A و B) مشاهده می‌شود که حجم و رنگ‌پذیری مریستم افزایش یافته و رنگ‌پذیری آن در بخش‌های مختلف تقریباً همگن است که نتیجه شدت گرفتن فعالیت میتوزی رأس مریستم یعنی ناحیه تونیکا و کورپوس است. بخش انتهایی این مریستم، می‌تواند به‌عنوان مریستم هاگزا (Sp.m) و بخش‌های زیرین آن با رنگ‌پذیری کمتر به‌عنوان مریستم نهنجی (Re.m) است. با تسهیم مریستم زایشی، اجزای ساختاری گل، مانند براکته (br)، کاسبرگ (Se) و پریموردیوم پرچمی (St.P) مشخص می‌شود (شکل C1). در مرحله بعدی، بعد از تشکیل پرچم، گلبرگ (Pe) در نتیجه فعالیت بخش حاشیه‌ای مریستم هاگزا (Sp.m) در مقابل پرچم تشکیل می‌شود و در مرحله آخر، پریموردیوم تخمدان (Ov.P) شکل می‌گیرد (شکلD1). در مراحل پیشرفته‌تر به‌ترتیب از خارج به داخل کاسبرگ (Se)، پریموردیوم گلبرگ (Pe)، پریموردیوم پرچم (St.P) و پریموردیوم تخمدان (Ov.P) قابل تشخیص است. پریموردیوم‌های پرچمی مراحل تکوین را سریع‌تر از پریموردیوم برچه‌ای طی می‌کنند. توده تشکیل دهنده پریموردیوم تخمدان با تکثیر و تغییر شکل خود، آغاز سازمان‌یابی حفره تخمدانی (Ô) و خامه (Sty) را نشان می‌دهد. پریموردیوم برچه‌ای از همان مراحل ابتدایی در قسمت بالا از وسط دچار یک شکاف طولی شده که در نهایت منجر به تشکیل کلاله و خامه دوشاخه می‌شود (شکل E1).  


 

A

I.F 

E.F

Pr

Mm

T

C

Se.P

B

br

Sp.m

Re.m

 

C

St.P

Se

Se

St

Pe

Ov.P

D

Ov.P

Sty

St.P

Pe

Se

Se

 

E

Pe

 

 

 

 

 

 

 

 

 


شکل 1- A: برش طولی مریستم رأس ساقه گیاه عناب، رنگ‌آمیزی با هماتوکسیلین و ائوزین (ابژکتیف40×)، تونیکا (T)، کورپوس (C)، مریستم مغز (M.M)، طناب پروکامبیومی (Pr)، بنیان برگی (I.F)، طرح اولیه برگی (E.F). B: برش طولی مریستم زایشی در ابتدای تشکیل پریموردیوم کاسبرگ (Se.P)، مریستم هاگزا (Sp.m)، مریستم نهنجی (Re.m)، براکته (br). C: برش طولی مریستم زایشی در ابتدای تشکیل کاسبرگ (Se) و پرومریستم پرچم (St.P). D: برش طولی مریستم زایشی در مرحله تشکیل پرومریستم تخمدان (Ov.P)، کاسبرگ (Se)، گلبرگ (Pe). E: برش طولی از مراحل ابتدایی تکوین گل در گیاه عناب، کاسبرگ (Se)، گلبرگ (Pe)، پریموردیوم پرچم (St.P)، پریموردیوم تخمدان (Ov.P)، خامه (Sty)، حفره تخمدانی (Ô)، رنگ‌آمیزی با هماتوکسیلین و ائوزین (ابژکتیف40×).


بررسی تغییرات میزان پروتئین، آنزیم‌ها و کربوهیدرات‌ها: در بررسی نتایج، میانگین‌ها مربوط به 3 بود و تمام گروه‌بندی‌ها بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شد.

نتایج بررسی تغییرات میزان پروتئین اندام هوایی در عناب نشان داد که در هر دو شهر میزان پروتئین در شهریور بیشتر از خرداد شده است؛ اما میزان پروتئین همواره در گلستان کمتر از مازندران بوده است. سطح پروتئین دو شهر در هر ماه بر اساس آزمون چند دامنه دانکن تفاوت معنی‌داری را نشان نداد؛ اما بین ماه‌های مختلف تفاوت معنی‌دار (در سطح 05/0) بود (نمودار 1).

نتایج بررسی تغییرات میزان فعالیت آنزیم پراکسیداز اندام هوایی در عناب نشان داد که در هر دو شهر میزان فعالیت آنزیم پراکسیداز در شهریور بیشتر از خرداد بوده است (نمودار 2).

نتایج بررسی تغییرات میزان فعالیت آنزیم کاتالاز اندام هوایی در عناب نشان داد که در هر دو شهر میزان فعالیت آنزیم کاتالاز در خرداد بیشتر از شهریور بود؛ اما میزان فعالیت آنزیم کاتالاز همواره در گلستان بیشتر از مازندران بوده است (نمودار 3).

نتایج بررسی تغییرات میزان فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز اندام هوایی در عناب نشان داد که در هر دو شهر میزان فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز در خرداد بیشتر از شهریور بود اما میزان فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز همواره در گلستان بیشتر از مازندران بوده است (نمودار 4).

 

نمودار 1- تغییرات مقدار پروتئین برگ(FW)mg.g-1  ) در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

 

 

نمودار 2- تغییرات مقدار آنزیم پراکسیداز برگ (FW.min-1)OD.g-1 در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

 

نمودار 3- تغییرات مقدار آنزیم کاتالاز برگ (destroyed.min-1 µm H2O2 ) در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

 

نمودار 4- تغییرات مقدار آنزیم آسکوربات پراکسیداز برگ (FW.min-1)OD.g-1 در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

 

نمودار 5- تغییرات مقدار کربوهیدرات محلول برگ برحسب   mg.l-1 در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

نتایج بررسی تغییرات میزان کربوهیدرات محلول اندام هوایی در عناب در نمودار 5 مشاهده می‌شود. نتایج بررسی‌ها نشان داد که در هر دو شهر میزان کربوهیدرات محلول در خرداد بیشتر از شهریور است؛ اما میزان کربوهیدرات محلول در مازندران بیشتر از گلستان بوده است (نمودار 5).

نتایج بررسی‌ها نشان می‌دهد که در هر دو شهر میزان کربوهیدرات نامحلول در شهریور بیشتر از خرداد بوده است (نمودار 6).

 

نمودار 6- تغییرات مقدار کربوهیدرات نامحلول برگ برحسب mg.l-1  در گیاه عنّاب - گروه‌بندی بر اساس آزمون دانکن (05/0p£) انجام شده است.

بحث

مریستم رویشی: مریستم رویشی: رشد طولی ساقه و پیدایش اندامهایی نظیر شاخهها، برگها و گلها در نهاندانگان به وسیله مریستم رأسی آنها صورت میگیرد. تونیکا و کورپوس در تبدیل مریستم رویشی به زایشی نقش دارند. حلقه بنیادی که دارای سلولهای ریز و به هم فشرده میباشد دارای توانایی تکثیر زیاد در مراکز زایشی برگهاست (10). مریستم رأسی در گیاه مورد پژوهش (Zizyphus jujuba)  گنبدی شکل بود که مشابه وضعیت مریستم رویشی در گیاه کنار  (Ziziphus spina-christi)  است (15). وضعیت تونیکا و کورپوس و بنیان‌های برگی در عناب با گزارش‌های عطری (١٣۷۰) همسویی دارد (6).

مریستم زایشی: مجموعه مشاهدات ما در زمینه توقف تشکیل پریموردیومهای برگی، فعال شدن تونیکا و کورپوس و کاهش فعالیت حلقه بنیادی با فعال شدن مریستم زایشی با گزارش‌های مجد و رولان (١369)، مجد و همکاران در مورد گیاه انگور شاهانی (1390)، چهرگانی و همکاران (1388) در مورد گیاهTanacetum parthenium L. ، چهرگانی و همکاران (1389) در مورد گیاه Inula aucheriana DC. و همچنین با نتایج چهرگانی و همکاران در مورد گیاه Tripleurospermum disciforme   همسویی دارد (10، 11، 2، 3، 4).

پروتئین: ممکن است افزایش سطح پروتئین در شهریور نسبت به خرداد به دلیل افزایش دما و کاهش بارندگی در طول فصل تابستان به نسبت بهار باشد. این نتیجه با نتایج اسفندیاری و همکاران (1388) که در مورد اثر تنش خشکی بر گیاهچه‌های گندم کار کرده‌اند، همسویی دارد (1).

آنزیم پراکسیداز: با توجه به نمودارهای وضع آب و هوای مناطق مورد بررسی، افزایش سطح آنزیم پراکسیداز در شهریور نسبت به خرداد ممکن است به دلیل سازگاری گیاه با افزایش دما و کاهش بارندگی در طول فصل تابستان به نسبت بهار باشد. این نتیجه با نتایج اسفندیاری و همکاران (1388) که در مورد اثر تنش خشکی بر گیاهچه‌های گندم کار کرده‌اند مطابقت دارد (1).

آنزیم کاتالاز: با مقایسه‌ نمودارهای وضع آب و هوای مناطق مورد بررسی، بیشتر بودن میزان فعالیت کاتالاز در گلستان نسبت به مازندران ممکن است به دلیل کمتر بودن بارش و بیشتر بودن دما یعنی بطور کلی خشک‌تر بودن اقلیم گلستان نسبت به مازندران باشد. همچنین ممکن است بیشتر بودن ارتفاع گالیکش در گلستان که باعث افزایش جذب اشعه UV به نسبت بهشهر مازندران می‌شود نیز بر این پدیده اثر گذاشته باشد. این نتیجه با نتایج اسفندیاری و همکاران (1388) که در مورد اثر تنش خشکی بر گیاهچه‌های گندم و همچنین نصیبی (1385) که بر روی اثر اشعه ماوراء‌بنفش بر دو گونه بنگدانه کار کرده‌اند همسویی دارد (1، 14).

آنزیم آسکوربات پراکسیداز: بیشتر بودن میزان فعالیت آسکوربات پراکسیداز در گلستان نسبت به مازندران ممکن است به دلیل کمتر بودن بارش و بیشتر بودن دما یعنی بطور کلی خشک‌تر بودن اقلیم گلستان نسبت به مازندران باشد که در نمودارهای وضع آب و هوای مناطق مورد بررسی مشخص است. همچنین ممکن است بیشتر بودن ارتفاع گالیکش در گلستان که باعث افزایش جذب اشعه UV به نسبت بهشهر مازندران می‌شود نیز بر این پدیده اثر گذاشته باشد. این نتیجه با نتایج اسفندیاری و همکاران (1388) که در مورد اثر تنش خشکی بر گیاهچه‌های گندم و همچنین نصیبی (1385) که بر روی اثر اشعه ماوراء‌بنفش بر دو گونه بنگدانه کار کرده‌اند همسوست (1، 14).

کربوهیدرات‌ها: بین سطح کربوهیدرات محلول و نامحلول دو شهر در هر دو ماه تفاوت معنی‌داری مشاهده نشده است. این مسئله ممکن است به این دلیل باشد که شدت تغییرات اقلیم و آب و هوایی به حدی نبوده که بتواند اثر زیادی بر روی سطح کربوهیدرات‌های محلول و نامحلول این گیاه بگذارد.

  1. اسفندیاری، ع.، شکیبا،م.، محبوب، س.، آلیاری، ه.،  برادران فیروزآبادی، م.، 1388، اثر تنش خشکی بر فعالیت آنزیمهای آنتی اکسیدان و پراکسیداسیون لیپییدی گیاهچه های گندم، مجله دانش کشاورزی، جلد 19،  شماره 2.
  2. چهرگانی، ع، ک، محسن زاده و همکاران،(1388)، مطالعه مراحل تکوین دانه گرده و تخمک در Tanacetum parthenium L.  ، فصلنامه زیست شناسی تکوینی، سال اول، شماره 3، دانشگاه آزاداسلامی واحد تهران شمال.
  3. چهرگانی، ع.، حاجی صادقیان، س.,محسن زاده، ف.،( 1389)، مطالعه مراحل تکوین دانه گرده و تخمک در Inula aucheriana DC.، جهاد دانشگاهی، زیست شناسی گیاهی.
  4. چهرگانی، ع.، زارع، ش.، حاجی صادقیان، س.، (1389)، رویان زایی در Tripleurospermum disciforme  : تیپ جدید و نادر از رویان زایی. مجله زیست شناسی ایران ، سال بیست و سوم، شماره 1، ص 26.
  5. زرگری،ع.۱۳۷۱.گیاهان دارویی. انتشارات دانشگاه تهران، جلد اول.
  6. عطری، مرتضی، 1370، ارگانوژنز و مورفوژنز گیاهی. جهاد دانشگاهی ارومیه.
  7. علی احمد کروری، س.، 1378، بررسی نحوه پاسخ آنزیم‌ها در درختان جنگلی به تغییرات عوامل زیست محیطی، انتشارات مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع
  8. قهرمان، احمد، 1373 ، فلور رنگی ایران.مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع، بخش گیاه شناسی.
  9. مجد، ا. ،شریعت زاده، م. ، 1379، میکروسکوپ الکترونی و هیستوتکنیک در میکروسکوپ الکترونی و نوری، آییژ.
  10. مجد، ا.، 1369، (تألیف: جان کلودرولان – فرانسواز رولان) اطلس زیست شناسی گیاهی، جلد 2، انتشارات جهاد دانشگاهی.
  11. مجد، ا.، صفاری، پ.، جنوبی، پ.، مهرابیان، ص.، (1390)، بررسی مراحل تکوین بخش‌های رویشی و زایشی انگور شاهانی، فصلنامه زیست شناسی تکوینی، سال سوم، شماره 10، دانشگاه آزاداسلامی واحد تهران شمال.
  12. مظفریان، و، 1377،فرهنگ نام‌های گیاهان ایران.تهران: فرهنگ معاصر، صفحه ۵۹۱
  13. مظفریان، و، 1379، رده بندی گیاهی، جلد دوم: دولپه‌ای‌ها، امیرکبیر.
  14. نصیبی، ف.، منوچهری کلانتری، خ.، 1385، کاربرد باندهای مختلف اشعه ماوراء بنفش در بالا بردن میزان برخی از ترکیبهای ثانویه در(Hyoscyamus)  دو گونه بنگدانه، فصلنامة علمی - پژوهشی تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران، جلد 22، شماره 2، صفحه 140 – 145.واحد تهران شمال

 

15.  Amina Sirag, Saied; , 2008, Jens Gebauer; Karl Hammer & Andreas Buerkert. "Ziziphus spina-christi (L.) Willd.: a multipurpose fruit tree," Genet Resour Crop Evol.

16.  Asada, K.; 1994. Mechanisms for scavenging reactive molecular cules generated in chloroplasts under light stress. In: Baker NR, Bower JR eds. Photo inhibition of photosyn thesis. From molecular mechanism to the field. Oxford: Bios Scientific Publishers, 129 – 142.

17.  Bradford, M.M; 1976. A rapid sensitive metod for the question of microprogram quantities of protein utilizing the principle of protein – dye binding. Anal. Biochen;72: 248 – 254.

18.  Browicz, K. , 1977. Rhamnaceae in Flora Iranica, Austria, AkademischeDruck- U. Verlagsanstalt Graz, No. 125, pp. 4-10.

19.  Kochert, G; 1978. Carbohydrate determination by the phenolsulfuric acid method. In: Hel ebsust, J.A.; Craig, J.S 9ed.; Handbook of phycological Metods; Cambridge univ. Press; 96 – 97.

20.  Koroi, S.A.A.; 1989. Gelelektrophers tische and spectral photometrischoe under uchungen zomeinfiuss der tempreture auf straktur and aktritat der amylase and peroxidase isoenzyme, Pheysiol;v.20: 15 – 23.

21.  Periera, G.J.G.; Molina, S.M.G.; Lea. P.J and Azevedo, R.A., 2002. Activity of antioxydaunt enzyme in response to cadmium in Crotalaria juncea. Plant soil; 239: 123 – 132.

22.  www.irimo.ir/farsi/amar/map/index.afp

23.  Zhihui Zhao · Mengjun Liu · PengfeiTu, Characterization of water soluble polysaccharides from organsof Chinese Jujube (Ziziphusjujuba Mill. cv. Dongzao), Eur Food Res Technol 2008.

  • Receive Date: 23 May 2012
  • Revise Date: 11 January 2014
  • Accept Date: 19 January 2014